腹腔注射操作步骤:1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上,提其尾巴中部,水平偏下往后轻拉,小鼠爪子会自然会抓住笼子,此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛,比较好是抓在小鼠的耳朵处,这样可以更好固定小鼠的头部,以防被咬。但是,切记力气不要过大,容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定,这样就可以将小鼠整个躯干固定好,注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置,如果小鼠躯干不能保持竖直,很容易扎到脏器,引起出血,影响实验。2.注射抓取小鼠后,应腹部向上,头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位,避免扎伤。右手持注射器,插入小鼠腹部,注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处,缓慢以45度左右进针,进针深度小于1cm,进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针:为了防止漏液,轻微旋转针头,再缓缓拔出。在实验前,准备酒精棉球,注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用,避免交叉染上。此外,注射前,也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤,可以明显辨别药物是否注射到腹腔,如果看到鼓包,就是注射到皮下了。常州卡文斯实验鼠饲养环境恒温恒湿,减少环境应激影响。NOD-Scid小鼠构建

BALB/c-nu裸鼠主要用途:广泛应用于zhong瘤学、免疫学、毒理学等基础医学和临床医学的研究。简介:1973年丹麦的C.W.Friis在BALB/cA近交系小鼠中发现自发性突变的无毛小鼠,该突变小鼠胸腺发育不良,免疫T细胞缺失,而培育成了BALB/cA-nu。特点:无毛、裸鼠、无胸腺。随着年龄增长,皮肤逐渐变薄、头颈部皮肤出现皱折、生长发育迟缓。由于无胸腺而只有胸腺残迹或异常胸腺上皮(该上皮不能使T细胞正常分化),导致缺乏成熟的T淋巴细胞,因而细胞免疫功能低下。但6~8周龄裸小鼠的NK细胞活性高于一般小鼠。B淋巴细胞正常,但其免疫功能欠佳。表现在B淋巴细胞分泌的免疫球蛋白以lgM为主,只含少量的IgG。抵抗力差,容易患病毒性肝炎和肺炎。因此必须饲养在屏障系统中。为了提高繁殖率和存活率,一般采用纯合型雄鼠与杂合型雌鼠交配的繁殖方式,可以获得1/2纯合型仔鼠。常用裸小鼠品系:BALB/c-nu、NIH-nu、NC-nuSwiss-nu、03H-nu、C57BL-nu等。A53T小鼠什么价格常州卡文斯实验鼠供应及时,支持全国科研单位需求。

实验动物常见的给药物使用方法式有:口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结:1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定,注意头一定要固定好,头和躯体要保持一条直线,并且灌胃时使小鼠成竖直位,头向上。2.把握要领,动作尽量迅速,减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量:0.1ml/10g体重:一只20g的小鼠,一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线,太松会动,太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针,抵达咽部会有抵触感,小鼠会有吞咽动作,此时阻力丧失,可继续下行。
实验动物是研究疾病发生/防治机制、新型药物的基础,包括实验兔子、实验猴子、实验猪、实验青蛙、实验鼠等。其中,实验鼠是继人类之后第二种完成全基因组测序的哺乳动物,其基因组中拥有人类99%蛋白编码基因的同源基因,是目前应用较广阔的实验动物,具有繁殖数量多、发育快、性成熟早、妊娠期短、饲养成本低、实验重复性高、对外来刺激敏感、遗传信息清晰等优点。实验鼠在医学领域应用十分广阔,可用于微生物学领域,研究吸血虫、锥虫、支原体、沙门氏菌等微生物寄生虫致病原理;可用于免疫学领域,研究免疫缺陷机理和相关药物;可用放射学领域,研究放射线照射剂量和辐射效应;可用于药物筛选领域,筛选药物对疾病的作用,获得每种药物治疗效果;可用于安全测试领域,判断新产品安全性;可用于遗传学领域,研究遗传病基因结构和功能,构建人类遗传病动物模型;可用于老年学领域,探究抗老老药物效果。ICR/JCL小鼠是进行免疫药物筛选,复制病理模型较常用的实验动物。

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