鼠基本参数
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  • 卡文斯大小鼠
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鼠企业商机

转基因小鼠(TG)模型是通过人工操作将外源基因整合到小鼠的基因组中,使其在遗传上发生改变,并表达新的基因,从而获得转基因小鼠。应用方式如下:借助显微注射技术将外源基因随机整合到小鼠基因组中,以获得过表达或条件性过表达某些基因的基因工程小鼠模型db基因为4号染色体隐性突变基因,能导致肥胖伴糖尿病,纯合子有过超高出寻常的血糖症;其瘦素受体基因失去功能,纯合的糖尿病自发突变小凰在出生后2周内就发生高胰岛素血症,血浆胰岛素开始升高,在3-4周龄时产生可以辨认的肥胖表型,4-8周血糖升高,同时胰岛素分泌增加至正常值的数倍,但组织中的胰岛素受体明显少于正常,并且受体的结合力也低于正常,8周后就发展为非常严重的过超高出寻常的血糖症,期间伴有胰岛素抵抗,B细胞功能衰竭,,一般在8~10个月内死亡,临床症状和病程比ob/ob更严重,寿命更短;纯合小多食、多饮、多尿,且纯合db/db小不育应用领域:更广地应用于糖尿病、肥胖症、伤口完成疗程延迟、丘脑/垂体后叶缺陷、胰脏损伤、生育障碍及免疫和炎症研究。卡文斯实验鼠在免疫缺陷模型应用中广受科研机构好评。高尿酸小鼠选择

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BALB/c-nu裸鼠主要用途:广泛应用于zhong瘤学、免疫学、毒理学等基础医学和临床医学的研究。简介:1973年丹麦的C.W.Friis在BALB/cA近交系小鼠中发现自发性突变的无毛小鼠,该突变小鼠胸腺发育不良,免疫T细胞缺失,而培育成了BALB/cA-nu。特点:无毛、裸鼠、无胸腺。随着年龄增长,皮肤逐渐变薄、头颈部皮肤出现皱折、生长发育迟缓。由于无胸腺而只有胸腺残迹或异常胸腺上皮(该上皮不能使T细胞正常分化),导致缺乏成熟的T淋巴细胞,因而细胞免疫功能低下。但6~8周龄裸小鼠的NK细胞活性高于一般小鼠。B淋巴细胞正常,但其免疫功能欠佳。表现在B淋巴细胞分泌的免疫球蛋白以lgM为主,只含少量的IgG。抵抗力差,容易患病毒性肝炎和肺炎。因此必须饲养在屏障系统中。为了提高繁殖率和存活率,一般采用纯合型雄鼠与杂合型雌鼠交配的繁殖方式,可以获得1/2纯合型仔鼠。常用裸小鼠品系:BALB/c-nu、NIH-nu、NC-nuSwiss-nu、03H-nu、C57BL-nu等。GK大鼠构建常州卡文斯实验鼠配套提供详细遗传背景和饲养指南。

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腹腔注射操作步骤:1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上,提其尾巴中部,水平偏下往后轻拉,小鼠爪子会自然会抓住笼子,此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛,比较好是抓在小鼠的耳朵处,这样可以更好固定小鼠的头部,以防被咬。但是,切记力气不要过大,容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定,这样就可以将小鼠整个躯干固定好,注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置,如果小鼠躯干不能保持竖直,很容易扎到脏器,引起出血,影响实验。2.注射抓取小鼠后,应腹部向上,头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位,避免扎伤。右手持注射器,插入小鼠腹部,注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处,缓慢以45度左右进针,进针深度小于1cm,进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针:为了防止漏液,轻微旋转针头,再缓缓拔出。在实验前,准备酒精棉球,注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用,避免交叉染上。此外,注射前,也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤,可以明显辨别药物是否注射到腹腔,如果看到鼓包,就是注射到皮下了。

小鼠的抓取固定1.小鼠的抓取(1)右手提起小鼠尾巴,将其放在鼠笼盖或其他粗糙表面上(2)小鼠向前挣扎爬行时,再用左手拇指和食指抓住鼠耳和颈部皮肤抓取固定时需注意:过分用力,会使动物窒息或颈椎脱臼;用力过小,动物头部能反转来咬伤实验者的手。因此实验者必须反复练习,熟练掌握。2.小鼠的固定(1)徒手固定用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤,将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可。固定板固定鼠麻醉后置小鼠固定板上,取仰卧位,用胶布缠粘四肢,再用针透过胶布扎在板上,从而将小鼠固定在小鼠固定板上。(3)固定架固定让小鼠直接钻入固定架里,封好固定架的封口,露出尾巴。此装置特别适用于小鼠尾静脉注射等。常州卡文斯实验鼠运输全程温控,保障动物健康状态。

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品系名称:UOX(高尿酸小鼠)品系编号:C000123品系背景:C57BL/6J品系描述:卡文斯使用CRISPR-Cas9技术在C57BL/6]小凰基础上敲除尿酸氧化酶(Uox)的exon3,构建自发高尿酸血症的小鼠模型,纯合小鼠表现出严重的高尿酸血症和尿酸肾病,基因纯合小鼠可存活并可育,可以作为人类高尿酸血症及其相关肾病的动物模型。目前与昭衍(苏州)新药研究中心有限公司合作,完成了初步数据验证。数据显示,血尿酸水平稳定是理想高尿酸动物模型。应用领域:高尿酸血症、痛风。常州卡文斯实验鼠的基因编辑模型高效,助力生命科学领域突破性研究。APC-min小鼠公司排名

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实验动物常见的给药物使用方法式有:口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结:1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定,注意头一定要固定好,头和躯体要保持一条直线,并且灌胃时使小鼠成竖直位,头向上。2.把握要领,动作尽量迅速,减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量:0.1ml/10g体重:一只20g的小鼠,一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线,太松会动,太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针,抵达咽部会有抵触感,小鼠会有吞咽动作,此时阻力丧失,可继续下行。高尿酸小鼠选择

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