BALB/c-nu裸鼠主要用途：广泛应用于zhong瘤学、免疫学、毒理学等基础医学和临床医学的研究。简介：1973年丹麦的C.W.Friis在BALB/cA近交系小鼠中发现自发性突变的无毛小鼠，该突变小鼠胸腺发育不良，免疫T细胞缺失，而培育成了BALB/cA-nu。特点：无毛、裸鼠、无胸腺。随着年龄增长，皮肤逐渐变薄、头颈部皮肤出现皱折、生长发育迟缓。由于无胸腺而只有胸腺残迹或异常胸腺上皮(该上皮不能使T细胞正常分化)，导致缺乏成熟的T淋巴细胞，因而细胞免疫功能低下。但6～8周龄裸小鼠的NK细胞活性高于一般小鼠。B淋巴细胞正常，但其免疫功能欠佳。表现在B淋巴细胞分泌的免疫球蛋白以lgM为主，只含少量的IgG。抵抗力差，容易患病毒性肝炎和肺炎。因此必须饲养在屏障系统中。为了提高繁殖率和存活率，一般采用纯合型雄鼠与杂合型雌鼠交配的繁殖方式，可以获得1/2纯合型仔鼠。常用裸小鼠品系：BALB/c-nu、NIH-nu、NC-nuSwiss-nu、03H-nu、C57BL-nu等。卡文斯实验鼠的遗传背景清晰，实验数据更具可比性。实验鼠饲养管理
WISTAR大鼠主要用途：多用于肿块瘤体、免疫、药理、内分泌。简介：1907年由美国维斯塔尔(Wistar)研究所育成，现己遍及世界各国的实验室。我国从日本及前苏联引进，是引进较早、使用较广阔、数量较多的大鼠品系之一。特点：远交系大鼠，头部较宽、耳朵较长、尾的长度小于身长。性周期稳定，繁殖力强，产仔多，平均每胎产仔在10只左右，生长发育快。10周龄时雄鼠体重可达280～300g，雌鼠达170-260g。性情温顺。对传染病的抵抗力较强。自发性肿块瘤体发生率低。目前各地饲养的Wistar大鼠的遗传状况差异较大。SHR Rat大鼠应用常州卡文斯实验鼠的繁殖性能稳定，满足大规模实验需求。
卡文斯隆重推出基于CRISPR/Cas9技术的小鼠基因组编辑服务！CRISPR(ClusteredRegularlyInterspacedShortPalindromicRepeats)/Cas(CRISPR-associated)是近几年出现的一种由RNA指导Cas核酸酶对靶向基因进行特定DNA修饰的技术。它是细菌和古细菌为应对病毒和质粒不断攻击而演化来的获得性免疫防御机制。此系统的工作原理是crRNA(CRISPR-derivedRNA)通过碱基配对与tracrRNA(trans-activatingRNA)结合形成tracrRNA/crRNA复合物，此复合物引导核酸酶Cas9蛋白在与crRNA配对的序列靶位点处剪切双链DNA，从而实现对基因组DNA序列进行编辑；而通过人工设计这两种RNA，可以改造形成具有引导作用的gRNA(guideRNA)，足以引导Cas9对DNA的定点切割。基于CRISPR/Cas9技术，
实验鼠会不会咬人？咬了之后会不会得病？内心慌张惊恐怎么办？一般在受到惊吓的情况下小鼠才会咬人。其中黑色小鼠比白色小鼠更加“凶残”一些。但是，只要你克服了心理恐惧，再加上正确的手法，小鼠轻轻松松get到手。就算小鼠咬到你了，请不要担心，因为它们的居住环境比人类还要干净。通常科研工作者会将实验鼠饲养在专门的动物房中，会有专职人员“伺候”它们的吃喝拉撒。对于更娇贵的免疫缺陷的小鼠来说，它们会依据免疫系统的缺陷程度住在不同SPF(Specific-pathogen-free无特定病原体)级的实验室中，除了不能到处跑，较终要献身科研外，简直生活得不要太幸福，连科研人员见它们一面，都要穿上层层的防护服，通过一道道除菌装置。被咬到之后，千万不要慌张，因为你除了疼和血液流出之外，不会受到其他损失。如果实在控制不住自己的惊恐情绪，也请千万不要把小鼠扔出去！因为它们的天性是贴着角落跑，如果你把它们扔出去，几乎没有再把它们抓回来的可能性了。从某种意义上说，有着这样一种逻辑关系：扔出去的小鼠=抓不住=样品丢失=实验失败=半年白做=毕业更加遥远=头秃+抑郁=危害身心健康！常州卡文斯实验鼠经过严格筛选，确保每一只都符合科研实验的高标准要求。
智能化饲养管理系统和远程监控技术的应用，将提升实验动物管理的效率与质量控制。此外，替代方法的探索，如器官芯片、三维细胞培养等技术的进步，可能部分减少对实验鼠的依赖，促使科研伦理和动物福利达到新的平衡。卡文斯依托对实验鼠行业多年的深入监测与研究，综合分析了实验鼠行业的产业链、市场规模与需求、价格动态。报告运用定量与定性的科学研究方法，准确揭示了实验鼠行业现状，并对市场前景、发展趋势进行了科学预测。同时对实验鼠细分市场进行了详尽剖析。实验鼠报告为投资者提供了专业的市场洞察与决策支持，助力其精细把握投资机遇，有效规避市场风险。严格的质量控制体系保障常州卡文斯实验鼠的健康状态。MRL-Lpr小鼠常见问题
常州卡文斯实验鼠在神经科学领域的研究中表现优异。实验鼠饲养管理
实验动物常见的给药物使用方法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结：1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定，注意头一定要固定好，头和躯体要保持一条直线，并且灌胃时使小鼠成竖直位，头向上。2.把握要领，动作尽量迅速，减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量：0.1ml/10g体重：一只20g的小鼠，一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线，太松会动，太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针，抵达咽部会有抵触感，小鼠会有吞咽动作，此时阻力丧失，可继续下行。实验鼠饲养管理
