实验动物常见的给药物使用方法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结：1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定，注意头一定要固定好，头和躯体要保持一条直线，并且灌胃时使小鼠成竖直位，头向上。2.把握要领，动作尽量迅速，减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量：0.1ml/10g体重：一只20g的小鼠，一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线，太松会动，太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针，抵达咽部会有抵触感，小鼠会有吞咽动作，此时阻力丧失，可继续下行。常州卡文斯实验鼠在行为学实验中表现稳定，数据可靠。实验小鼠数量
小鼠的抓取固定1.小鼠的抓取（1）右手提起小鼠尾巴，将其放在鼠笼盖或其他粗糙表面上（2）小鼠向前挣扎爬行时，再用左手拇指和食指抓住鼠耳和颈部皮肤抓取固定时需注意:过分用力,会使动物窒息或颈椎脱臼;用力过小,动物头部能反转来咬伤实验者的手。因此实验者必须反复练习,熟练掌握。2.小鼠的固定（1）徒手固定用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。固定板固定鼠麻醉后置小鼠固定板上，取仰卧位，用胶布缠粘四肢，再用针透过胶布扎在板上，从而将小鼠固定在小鼠固定板上。（3）固定架固定让小鼠直接钻入固定架里,封好固定架的封口,露出尾巴。此装置特别适用于小鼠尾静脉注射等。阿尔兹海默症小鼠饲养管理常州卡文斯实验鼠的饲料营养均衡，严格符合国际实验动物饲养标准。
卡文斯有专业的小鼠代理繁育团队，丰富的项目经验拥有10年以上SPF级动物饲养与管理经验，为国内外闻名院校、医院等提供服务，客户遍布全国各地区专业的技术团队，保障动物质量专业的项目管理体系，实时跟进小鼠繁育进程，定期项目数据反馈业务优势：严格的饲养条件温度20-26°C相对湿度40-70%噪音≤60dB氨浓度15次/小时昼夜明暗交替12h/12h严格的饲养管理要求饮用水高压灭菌后的酸化水的酸化水，PH值在、垫料及饮水的更换频率至少每周一次，所有的脏笼具，水瓶浸泡井通过高压水枪清洗后，均经高压灭菌后方可进入屏障设施，其他不能进行高压灭菌的物品则通过严格的消毒流程进入。动物的日常检查生长情况的日常观察及异常情况反馈多面的质量监测检测内容检测手段检测周期小鼠（哨兵鼠）病原委外/自检每季度1次/每月1次小鼠饲料无菌检测委外/自检每批次小鼠饮水无菌检测委外/自检每季度1次/每月1次小鼠垫料无菌检测委外/自检每季度1次/每月1次消毒效果验证。
小鼠特性体型小，发育成熟时体重：雄性20~40g，雌性18~40g；面部尖突，长有19根长长的触须，耳耸立呈半圆形、眼大、鼻尖，尾长与体长约相等。尾部表皮覆有小角质鳞片。（大约200片鳞片）毛色因品系品种而异常见有：白色、野灰色、黑色、棕色、黄色、巧克力色和肉桂色等。近年来，基因工程技术不断实现突破，以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术得到了普遍运用，使实验鼠大规模生产成为可能，快速推动了实验鼠行业发展进程。与发达国家相比，我国实验鼠市场起步较晚，还处于发展早期，随着国内实验鼠企业培育技术逐渐成熟、产品种类愈加丰富，市场国产化率正在提升。卡文斯实验鼠在免疫缺陷模型应用中广受科研机构好评。
品系名称:ob/ob(I型糖尿病小鼠)品系编号:C000112品系背景:C57BL/6J品系描述:ob基因(0bese)为6号染色体隐性基因,瘦素基因突变，导致瘦素缺乏，纯合子导致单纯肥胖伴晚期糖尿病，平均产子5~8只;纯合突变小鼠4周龄时发生轻度肥胖，表现出高胰岛素血症和糖耐量受损，但没有形成糖尿病:4周之后体重迅速增加，多种代谢失调，表现出摄食过量，代谢减退体温下降，糖尿病样***综合症，糖耐量不良，血浆胰岛素升高,不育或不孕，创伤愈合能力受损，以及垂体和肾上腺***水平升高，身体脂肪含量增加，能量消耗和活动度降低，大约14月龄时死亡;纯合突变小无生育能力，所以必须用杂合子交配以保持此基因。应用领域:属常染色体隐性遗传Ⅱ型糖尿病动物，该小鼠肥胖症与人类的肥胖症很相似，利用这种小鼠曾进行了许多关于肥胖症的生化、症理、***及药物治疗等的研究。还包括腹部肥胖代谢综合征，非胰岛素依赖型糖尿病，瘦素缺乏或功能障碍，伤口愈合能力研究，生育缺陷。卡文斯实验鼠的繁育记录完整，确保科研可追溯性。NOD-Scid小鼠价格查询
常州卡文斯提供基因编辑实验鼠定制服务，助力前沿生物医学研究。实验小鼠数量
大鼠的抓取固定大鼠的抓取斯基本同小鼠，只不过大鼠比小鼠牙尖性猛，不易用袭击方式抓取，否则会被咬伤手指，抓取时为避免咬伤，可带上帆布手套。如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时，同样可采用左手固定法，只是用拇指和食指捏住鼠耳，余下三指紧捏鼠背皮肤，置于左掌心中，这样右手即可进行各种实验操作。也可伸开左手之虎口，敏捷地从后，一把抓住。若做手术或解剖等，则需事先麻醉或处死，然后用细棉线绳活缚腿，背卧位绑在大鼠固定板上；尾静脉注射时的固定同小鼠（只需将固定架改为大鼠固定盒即可）。注意事项：为了减少或避免大鼠在实验中发生的应激反应，以减少对实验者的攻击损伤，这里介绍几种抓取大鼠的技巧改进：（1）在抓取前可用一条清洁的毛巾蒙住大鼠全身，大鼠处于黑暗状态下神经会有所放松，看不到实验者的动作也会降低对实验者的攻击机会；（2）一般抓取大鼠都会抓住尾巴，但是有时大鼠尾巴不在身后而在其面前，这时实验者可能在抓取鼠尾的时候被大鼠攻击。这种情况一般可以轻推其腰臀部，使之变换姿势，待鼠尾调整到身后再进行抓取；（3）由于大鼠尾部被抓起时，会应激性地排便、排尿，所以比较好在粗糙表面上垫上报纸等，做好防范措施，减轻工作量。实验小鼠数量
