外泌体载药系统一直是众多研究者关注的焦点。SUN等人在早期的动物实验中对脂多糖（LPS）诱导的脓毒性休克小鼠模型进行腹腔注射含姜黄素的外泌体。结果表明，外泌体可用作kang炎药物的体内载体。自此，揭开了外泌体介导药物传递系统研究的新篇章。他们改用鼻腔内注射，结果发现，载有姜黄素或信号传导与转录激huo因子3抑制剂的外泌体可用于zhiliaoLPS诱导的脑炎症、实验性自身免疫性脑炎和GL26脑中流模型。随后又有研究者发现，向野生型小鼠静脉注射携带小干扰核糖核酸序列的外泌体，能明显抑制阿尔茨海默病zhiliao靶点β-淀粉样前体蛋白裂解酶1的表达。外泌体装载小分子药物的方法有很多,主要有被动孵育、超声、电穿孔及供体细胞载药等。安徽胎牛血清外泌体载药
外泌体载药系统一直是众多研究者关注的焦点。外泌体作为细胞-细胞间交流的“运载工句”，外泌体在正常及疾病下都发挥着不可忽视的功能。梓醇是地黄中主要的环烯醚萜类化合物, 句有抗氧化、抗凋亡和促神经营养因子生成等作用, 并句有保护神经细胞的功能。将负载梓醇的外泌体 (C-Exos) 与人神经母细胞瘤 (SH-SY5Y) 细胞共培养24 h, 与模型组及空白外泌体组相比, SH-SY5Y神经细胞存活率上升了17%, 由此证明梓醇能通过外泌体途径将有效的成分运送至神经细胞当中, 并起到神经保护的作用。山西外泌体载药纳米的制备方法间充质干细胞外泌体可递送突变型HIF-1α更好地恢复类固醇诱导的早期股骨头缺血性坏死。
影响外泌体载药效率的因素有许多：1外泌体的分离与纯化：目前，准确和标准的外泌体纯化方法较少，使用不同方法获得的外泌体其收率与纯度差别较大，需要根据研究目的不同选择适当的分离方法，超速离心法是外泌体纯化常用的手段，低速离心和高速离心交替进行的方法通常用于从大量样品中分离外泌体，但获得的外泌体纯度不高。外泌体的收率过低与低纯度会影响其对药物包载效率，难以实现大批量生产。2包载方法：根据包载药物的分子极性、相对分子质量及自身所带电荷等性质选择不同的包载方法。不同包载方法对于同一种药物的包载效率可能完全不同。
大分子蛋白类药物可以通过以下方法进行外泌体载药。Haney等人采用常温下共孵育、加入皂素后孵育、反复冻融、超声、挤出等多种不同的方法将过氧化氢酶包载到外泌体中。结果显示，外泌体通过超声和挤出两种方式句有较高的载药量，分别为26.1％和22.2％，通过被动扩散方式的载药量jin为4.9％，但当加入句有透皮促进作用的皂素后，外泌体的载药量会明显提高至18.5％。值得注意的是，外泌体的载药量不jin与载yao方式有关，也取决于药物的性质、外泌体脂质的组成，而且不同的载yao方式也会影响细胞对外泌体的摄取。载药的外泌体提纯以后一般会通过静脉注射、皮下注射、腹膜内注射或者中流处注射等方式进行疾病zhiliao。
外泌体直接载yao方式包括皂苷处理法、孵育法、冻融循环法、超声法和挤出法等。皂苷处理法指共培养外泌体、药物和皂苷溶液，然后通过透析膜、色谱柱纯化得到载药外泌体的方法。孵育法指药物和外泌体在适宜的条件下共培养。冻融循环法是经过冷冻、融化过程使外泌体包裹药物。超声法利用超声波使药物进入外泌体中，挤出法利用挤出机实现外泌体载带药物。其中皂苷辅助药物装载方法是直接载yao方式中常用的一种载yao方式。上述方法也存在一些缺点：孵育法操作简单，但载药量低；冻融循环法、超声法和挤出法对仪器的要求高，且可能会破坏外泌体的质膜结构造成药物泄露，终造成载药量不理想。间充质干细胞外泌体既有作为载药载体的特性，还有MSC的多种生物学功能，本身也可以作为“药物”使用。北京细胞样本外泌体载药价格比较
装载了连翘酯苷A(FTA)的A549来源的外泌体可以被A549细胞摄取。安徽胎牛血清外泌体载药
通过体外实验结果得出，负载miＲ-132的间充质干细胞外泌体能够明显增加内皮细胞的管腔样结构;在体内实验中，外泌体预处理的人脐静脉内皮细胞具有更强的血管生成能力。此外，在小鼠缺血心脏中植入的包载miＲ-132的外泌体明显增强了梗塞周围区域新血管生成并保护了心脏功能。心肌梗死后，移植MSCs的zhiliao作用也可能是由负载miＲ-125b-5p的外泌体改善自噬流实现的。有研究利用重组腺病毒介导miＲ-486基因修饰MSCs，结果发现，其能够提高MSC-Exo中miＲ-486的水平，而且发现高表达miＲ-486的MSC-Exo具有促进心肌细胞增殖、迁移以及抑制心肌细胞凋亡的作用，有望成为心脏再生修复的新策略。安徽胎牛血清外泌体载药
