外泌体载带蛋白质药物的方法包括直接和间接两种载yao方式。间接载yao方式是目前实现外泌体载带目标蛋白质的主要方法，通过基因工程使目标蛋白质核酸转染供体细胞，待供体细胞表达目标蛋白质后，分离纯化其培养基，得到载带有目标蛋白质的外泌体递送系统。主要缺点是载药周期长、载药量和载药过程不可控，在一定程度上限制该方法在构建外泌体递送系统上的应用；直接载yao方式是指不涉及外泌体供体细胞，直接通过某种化学或物理作用将外源性蛋白质载入外泌体中的方法。因周期短、操作简单、过程可控等优点，成为一种极句前景的研究方法。小分子抗ai药物DOX装载于HEK293T细胞来源外泌体内可用于EL4小鼠淋巴瘤模型的抗ai研究。北京细胞外泌体载药实验咨询问价
外泌体载药系统中外泌体提取的方法有很多种，有差速超高速离心法、超滤法、试剂盒提取方法、磁珠免疫法等，但单一外泌体分离方法都有其不可解决的弊端，而联合不同的分离方法可得到更纯净、更丰富的外泌体。在装载连翘酯苷A(FTA)的外泌体递药系统的功效中的研究中，采用了差速离心法和超滤法提取外泌体，先使用超滤管浓缩细胞上清液，富集外泌体，再使用超高速离心提取外泌体，缩减了离心次数和时间，提高了外泌体提取效率，且整个过程简单易操作。同时采用低温超声孵育的方法制备FTA-Exos递药系统。北京动物细胞样本外泌体载药咨询问价外泌体可作为天然的药物运载系统，将zhiliao分子、药物等运送至靶细胞，进而发挥zhiliao作用。
外泌体载药系统一直是众多研究者关注的焦点。外泌体作为一种潜在的理想型药物递送载体，可以利用化学和基因工程等方法对其进行内部及膜表面工程化改造，将化学药物、功能短肽、小干扰RNA等多种生物活性物质包载到外泌体中，可实现特定类型的细胞或组织的靶向药物递送。外泌体的生成是一个自然过程，与其他人工合成的载药系统相比，其装载方案有多种，如分泌前细胞工程装载和纯化后外泌体装载。但需要注意的是，外泌体装载合成的反应条件可能会对外泌体及其母细胞产生不利的影响，而且体外实验和体内动物模型实验都需要大量的母细胞分泌产生足够的外泌体。因此，如何提高外泌体载药系统的产量应用于临床疾病的zhiliao将是一个挑战。
有研究发现，在外泌体载药系统中，对外泌体的产生环境进行干扰(如，缺氧)能够改变外泌体的分泌组分。Zhu等人研究了缺氧处理的间充质干细胞（MSCs）来源外泌体(ExoH)在心肌修复方面是否优于其在常氧条件下产生的外泌体(ExoN)。在小鼠心肌梗死实验中，ExoH处理的小鼠具有更高的生存率、更小的疤和更好的心脏功能恢复。进一步研究发现，相比于ExoN，ExoH具有更高表达水平的miＲ-210以及对外泌体分泌至关重要的中性鞘磷脂酶2(nSMase2)的表达。类似地，Zhu等人发现缺氧条件下MSC-Exo递送的miＲ125b-5p能够通过改善心肌细胞凋亡来促进缺血性心脏修复。此外，他们还将ExoH与缺血心肌靶向肽缀合，构建了一种新型的药物递送载体，增强了缺血性疾病的药物递送特异性。MHS来源外泌体装载连翘苷（phil）后粒径稍微增大。
外泌体的提取方法在外泌体载药系统中应用——聚合物沉淀法。用于分离病毒和其他的生物大分子，已有50多年历史,近几年,将其作为一种新的方法来分离外泌体。目前,市场已经有应用聚乙二醇(polyeth yleneglycol,PEG)溶液提取外泌体的试剂盒,常见的是SystemBiosciences公司的ExoQuick®和ExoQuick-TC®kits,该试剂盒操作简单不需要特殊的仪器,但是价格昂贵。提取外泌体的试剂盒主要成分是PEG8000(30%~50%),将试剂盒与体液或细胞培养液4℃孵育过夜,之后再低速离心。即可进行外泌体的提取，此方法实行起来较为简单。负载姜黄素的外泌体能促进抗精神类药物作用下的细胞胆固醇外流, 减少因药物不良反应造成的细胞内脂质沉积。北京细胞外泌体载药实验咨询问价
外泌体可以通过细胞内吞的方式将紫杉醇释放到受体细胞中，提高药物对供体中流细胞的毒性。北京细胞外泌体载药实验咨询问价
外泌体的提取方法在外泌体载药系统中应用——超高速离心法。其中超高速离心法是常用的,该方法是被誉为分离外泌体的“金标准”。因操作简单,不需要复杂的技术支持,并且成本相对较低而被广fan使用。但是该方法耗时、产率低,得到的外泌体的数量和质量很大程度上受转子的类型、转子沉降角度等因素影响,其中主要的问题就是差速离心法获得的沉淀物是外泌体,但也会有其他的囊泡、蛋白质或蛋白和RNA的聚集体。所以得到的外泌体的纯度和产量都不高。北京细胞外泌体载药实验咨询问价
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