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动物实验外包模型介绍：帕金森(PD)模型6-OHDA致大鼠PD模型的制作：(1)SD大鼠称重，按每笼5-6只饲养。在实验设计的时间点，将大鼠以1%戊巴比妥钠麻醉，待动物失去知觉即可开始操作。(2)大鼠用立体定位仪将双耳及门齿固定。自矢状缝皮肤划开，棉球止血，定位，钻孔，挑破脑膜（以黑质致密部单侧损毁为例，参照Paxinos图谱确定注射坐标，前颅后5.2mm,左侧或右侧旁开2.2mm,进针深7.8mm)。(3)微量注射器注射，以浓度2µg/µL，注射速度1µL/min注射，并留针10min,以1mm/min的速度退针。止血，缝合伤口。在实验动物苏醒的过程中，注意保温，观察各项生命体征。156第四章，神经系统疾病常用动物模型的制作在手术后的数周内，观察动物的进食、体重、行为学变化等情况。单侧损毁的方法，技术上比较成熟，操作较易、死亡率低，模型相对稳定，易区分双侧肢体运动细小异常，能对比患侧黑质的手术前后及与正常侧表现。双侧毁损是较大范围神经化学和行为学损伤，更似人类PD。动物实验外包、细胞实验外包，靠谱专业的实验外包平台。云南质量好的动物实验外包周期

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动物实验外包模型介绍：静脉血栓栓塞(VTE)大鼠模型建模方法：1.术前一晚禁食，自由饮水。2.称量大鼠，腹腔注射水合氯醛（15%）350mg/kg麻醉，腹部正中剃毛后用碘酒及酒精擦拭手术区域。3.沿腹白线切开腹腔，钝性分离下腔静脉，用5-0缝线线在肾静脉下方结扎下腔静脉和其主要分支，再用5-0缝线缝合内层，3-0缝线缝合外层，将大鼠置于加热垫维持肛温在37±0.5℃。4.待大鼠苏醒后自由饮水，正常饲养。

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动物实验外包模型介绍：脑出血模型：麻醉后固定大鼠，手术刀片正中失状切开，用过氧化氢溶液剥蚀骨膜，充分暴露颅骨。以前卤为原点，向其右方3mm处用牙科钻钻一直径约1mm的圆孔，将微量注射器沿钻孔方向垂直进针，深约6mm，进针后缓慢而匀速地推动针柄，直至将注射器内的胶原酶缓慢完全注入脑内，注射完毕后留针，后缓慢退针。磷酸锌水门汀封闭颅骨钻孔，缝合皮肤，伤口局部碘伏消毒。这种模型的优点是容易控制操作过程，注射量为1μl，熟手操作可能20分钟内就能搞定；此外模型一致性很好，注射后2小时左右即可出现典型的局部血肿，且血肿在24小时后一般不会再扩大了。这一特征意味着模型重复性好。但是此模型也存在一定的难点。胶原酶-肝素的用量对实验结果影响较大。用量少，达不到效果；用量大了，动物容易死亡。动物模型 - 南京英瀚斯生物提供小鼠模型.**模型.动物实验外包。

动物实验外包模型介绍：复合因素致萎缩性胃炎动物模型【造模方法】1.大鼠以20mmol/L去氧胆酸钠每日灌胃6ml/kg,连续27周;40%酒精每周二、五空腹灌胃6ml/kg,连续12周,之后改为60％酒精,再连续15周;0.1%氨水放在避光的饮水瓶中,自由饮用,每天调换,连续27周。2.大鼠用0.2%去氧胆酸钠作饲料,每天以55℃热开水2ml/只进行灌胃刺激,并在造模的第1周及第5周每只皮下注射佐剂抗原免疫1次。造模期间动物常规喂养,连续造模90天。本法也可将0.2%去氧胆酸钠换为猪胆汁,将胆汁与50℃热水1：1比例12.5ml/kg灌胃。3.大鼠以60%酒精,每周空腹灌胃2次,每次8ml/kg;20mmol/L去氧胆酸钠灌胃,每日1次,每日8ml/kg;0.05％~0.1%氨水作为大鼠日常饮用水自由饮用,并记录每日饮用量;5mg/ml吲哚美辛灌胃,每日1次,每次8ml/kg,共24周。观察指标为:病理组织学改变,胃黏膜屏障功能指标,胃分泌功能指标等。动物实验外包-实验外包检测。山东模型动物实验外包实验室

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动物实验外包模型介绍：心肌肥厚(CH)大鼠模型建模方法：1.大鼠注射麻醉2.将大鼠右侧靠近右肾和胸骨的部位用剃毛器剃干净，酒精碘酒消毒3.在右侧肋骨下方用眼科剪竖直开2cm左右的切口，无创分离出右肾周围的组织脂肪4.用无菌棉球垫在右肾上方，显微镊分离出右肾内侧腹主动脉5.将6-0无菌丝线从分离的腹主动脉穿过，根据大鼠体重放上合适的垫针扎紧丝线，抽出垫针，造成约60%狭窄6.将多余的丝线剪断，移除棉球，注入0.5ml生理盐水，用5-0丝线将肌肉层和皮肤层缝合，涂上碘酒消毒7.术后青霉素20万U/只/天连续肌肉注射1周，预防感染。大鼠腹主动脉缩窄术后4周可达***心室肥厚模型，8周可达心衰模型。云南质量好的动物实验外包周期

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