基因药物常用的AAV载体有三种生产方法，分别是三质粒瞬转体系、杆状病毒表达载体体系和包装细胞体系。其中，20多年前开发的三质粒瞬转表达技术仍然占据腺相关病毒AAV生产的主流地位，其三质粒分别是Helper质粒（含E2a/b、E4和VARNA基因）、目标基因表达质粒及辅助质粒（含Cap和Rep基因）。虽然AAV病毒载体的血清型不同，但AAV的生产流程基本一致，主要有质粒共转宿主细胞HEK293、293细胞生产病毒颗粒、从细胞培养上清或/及细胞裂解液中收获病毒载体、纯化/制剂/无菌过滤/灌装等流程。在AAV生产过程中使用SAN HQ高盐核酸酶。山东SAN HQ高盐核酸酶70921-202
大规模生产阶段，AAV/LV载体生产流程跟抗体、疫苗类药物的生产类似，主要包含上游培养、下游纯化及制剂部分。上游培养分为质粒开发、细胞扩增、三质粒共转染及病毒载体生产等步骤。下游纯化分为细胞裂解释放AAV病毒颗粒（可以通过去污剂、机械作用、高渗或冻融操作等）or收获细胞上清液得到含LV病毒原液、加入核酸酶以减少宿主细胞核酸污染、澄清是通过离心或过滤等方法去除细胞碎片和杂质等、超滤浓缩以减少后续色谱纯化体系、亲合及离子交换等纯化得到高纯度病毒载体。制剂部分主要是超滤更换缓冲液、过滤除菌及制剂灌装等。福建上海倍笃生物高盐核酸酶70921ArcticZymes Technologies成立于20世纪80年代后期，总部位于挪威北部的特罗姆瑟(Tromsø)。
相比传统的Benzonase核酸酶，SAN HQ高盐核酸酶的优势是在400mM-600mM盐浓度条件下具有适宜酶活性。在这个条件下，AAV病毒载体聚集更少、更加稳定；SAN HQ的使用能够简化生产工艺、降低酶用量及成本，不需额外脱盐操作；AAV病毒载体得率更高，且HCD残留更少、AAV产物更稳定。曲光教授在2005年发表的文章中，以AAV2为例探讨了引起AAV病毒聚集的因素，并探索了AAV病毒纯化和制剂过程中抑制聚集的方法。该文章通过筛选发现，高盐浓度能够抑制AAV病毒团聚，让AAV病毒更加稳定，且高盐浓度并不削弱AAV病毒的侵染活性。
ArcticZymes Technologies成立于20世纪80年代后期，致力于从海洋生物中识别新的冷适应酶。ArcticZymes目标明确，推进分子研究、诊断和therapeutics领域的发展。30多年来，ArcticZymes只专注于酶学研究，汇集一批志同道合的科学家，在酶学领域追求zhuoyue、勇于创新。ArcticZymes开发创新解决方案，与客户紧密协作，提升产品品质，从高质量到zhuoyue，达成他们的目标，重新定义生物药生产的边界。在ArcticZymes，我们精心设计解决方案，以从未出现的方式推动行业向前发展。SAN HQ高盐核酸酶更适合用于AAV生产。
Mayer等（2023）以measles virus(麻疹病毒，MV)为例，评估了四种不同核酸酶（BenzonaseTM、DeneraseTM、M-SAN HQ中盐核酸酶及SAN HQ高盐核酸酶）对于染色质DNA去除的效果。Vero细胞通过微载体贴壁培养来生产麻疹病毒MV，72hr后收获上清液，使用3µm cellulose filter(Sartorius)过滤后分装多份，置于-80℃保存便于后续使用。在解冻后的上清中调节对应盐浓度，并加入50 U/ml核酸酶，37℃孵育2hr进行消化，消化后留样；将消化后上清液过Capto Core 700 (Cytiva)柱子，收集流穿液，之后洗杂、洗脱，并分别留样。通过SDS-PAGE分析发现，相比Benzonase等传统核酸酶，在生理盐条件下M-SAN HQ中盐核酸酶更高效将染色质DNA剪切成更小片段，甚至将核小体DNA剪切更彻底。SAN HQ高盐核酸酶在高盐浓度下具有较高活性。云南高盐条件高盐核酸酶70921
SAN HQ是生物工艺流程中去除核酸污染的理想选择。山东SAN HQ高盐核酸酶70921-202
经典的慢病毒载体（LV）的生产工艺如下，——三质粒系统瞬时转染HEK293细胞系，转染24小时后LV由转染阳性细胞生产并排出到培养上清液中；收获上清培养液后，加入核酸酶去除HCD污染，通过澄清步骤去除大的细胞碎片等杂质；下游纯化步骤分离LV载体，纯化方法包括切向流过滤TFF、色谱纯化及超速离心；纯化后的LV病毒颗粒经过无菌过滤，更换到优化后的配方中，灌装并冷冻保存。每批Car-T生产时取对应量的LV病毒，切忌反复冻融，否则LV病毒会失活。山东SAN HQ高盐核酸酶70921-202
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