连云港基因编辑脱靶检测安全性评价

目前鼓润已掌握了该项技术，简述如下：1、CRISPR与dsODNtag整合的实验技术及高通量测序建库流程将靶向于目标基因组位点的CRISPR质粒与dsODNtag以核电转的方式同时转染入真核细胞，CRISPR造成基因组双链断裂后，dsODNtag将整合入断点处，作为后续分析在靶与脱靶情况的标记。转染后3天收集细胞的DNA进行高通量建库。2、GUIDE-seq生信分析方法1）搭建了高通量测序的数据分析流程。2）利用该技术分析了CRISPR靶向编辑某细胞系基因的在靶与脱靶情况。其中一例样品的分析结果如图4所示：Sequencesofoff-targetsitesidentifiedbyGUIDE-seq.Theintendedtargetsequenceisshowninthetoplinewithcleavedsitesshownunderneathandwithmismatchestotheon-targetsiteshownandhighlightedincolor.GUIDE-seqsequencingreadcountsareshowntotherightofeachsite.3）利用PCR扩增技术联合Sanger测序鉴定了分析出的脱靶位点。脱靶检测企业，推荐唯可生物，实验实力强，专业性高，检测效率高，结果准确率高。连云港基因编辑脱靶检测安全性评价

2022年2月下旬，在医麦客举办的年度盛会——“蓄力前行，助航新生——2021 CSGCT基因与细胞zhiliao医学峰会”期间，唯可生物创始人兼CEO-吴宁博士分享了唯可生物在基因zhiliao赛道针对安全性展开的技术服务，让在场行业大咖和观众真正领会到ISA(integration site analysis，整合位点插入分析)领域国际金标准技术的优势，以及基因编辑定量脱靶检测、载体拷贝数检测、载体质量控制等多项检测技术的行业意义。吴宁博士毕业于德国海德堡大学，德国国家aizheng研究中心(DKFZ)，并于2021年3月同几位合伙人联合创立了上海唯可生物科技有限公司。其创始团队拥有的检测技术包括源于DKFZ，Manfred Schmidt团队的LAM-PCR(linear amplification-mediated Polymerase Chain Reaction，线性扩增阳离子介导的聚合酶链反应)，LTA-PCR(Ligation-mediated target amplification Polymerase Chain Reaction，连接介导的目标扩增聚合酶链反应)和TES(Target enrichment sequencing，靶向富集测序)体系，并基于此形成的多项全球lingxian的基因zhiliao安全性检测技术。宁波off-target脱靶检测通过对DSB的标记实现了全基因组无偏脱靶检测，如IDLVs、BLESS、GUIDE-seq技术等。

基因zhiliao产品特有的可能会引起迟发性不良反应的风险因素包括：基因组整合活性基因zhiliao产品可能会采用修饰宿主基因组的技术，并有可能在宿主细胞或组织中持续存在。很多基因zhiliao载体的基因整合不会指向基因组的特定位点，可能在整合位点处产生插入突变、或jihuo整合位点附近的原基因等，进而破坏重要基因功能或增加恶性liu的风险，例如，国外已有多项研究报告在接受了使用γ-逆转录病毒载体转导的基因修饰细胞zhiliao的受试者中发生白血病。因此，对于存在此类风险的产品，有必要进行长期随访临床研究以评估出现迟发不良反应的风险。

TCR修饰免疫细胞的脱靶毒性可通过评估TCR与人体自身抗原肽的交叉识别能力来评估。首先，应采用体外试验测定TCR修饰的免疫细胞与人自身抗原肽-HLA（与递呈靶抗原肽的HLA等位基因相同）复合物的亲和力，并说明抗原肽的选择依据及选择范围。此外，还应研究其他相关或不相关的蛋白中是否含有靶抗原肽序列。如果TCR与人自身抗原肽有交叉反应可能，应确定靶抗原肽的较小识别基序（motif），并采用计算机预测分析评估交叉反应性。如果计算机预测可识别出具有潜在交叉反应性的抗原肽，应在体外测定TCR修饰免疫细胞对表达相应蛋白或递呈相应抗原肽的的细胞的识别能力。如果不能排除交叉反应性，应基于含有潜在交叉反应性抗原肽的蛋白的表达模式以及TCR与潜在交叉反应性抗原肽的亲和力来进行风险评估。为获得TCR与其他等位HLA潜在交叉反应性的信息，应进行充分的HLA交叉反应性筛选。对于TCR修饰的T细胞，还应关注引入TCR链和内源性TCR之间的错配可能性，应描述和说明旨在降低错配可能性的TCR设计策略。针对已经获得的有切割能力的sgRNA，需要进一步明确其体内脱靶效应。

使用CRISPR/Cas9、ZFNs和TALENs等设计核酸酶进行基因组编辑，可以将遗传物质定向导入哺乳动物基因组的特定位点。然而，可能会出现非预期的靶上和靶外基因组修饰，这可能导致基因组不稳定，并破坏正常基因的功能，从而可能导致临床前和临床研究中的安全问题。基因编辑目前的脱靶分析技术主要依赖于生物信息学预测和全基因组脱靶检测技术。这些预测缺乏可靠性，因为它们只涵盖了潜在基因组改变的一小部分。而频率低于0.5%的脱靶突变大多无法被全基因组脱靶检测技术检测到。我们是开发用于全基因组靶向/非靶向分析的无偏分析的先驱。靶向基因组编辑唯可生物为基因编辑安全性评估提供多方面的PCR和基于NGS的分析。我们的多功能且经济高效的检测方法可检测靶向和非靶向基因组改变。我们先进的分析技术与强大的内部生物信息学体系相结合，可靠地量化了预期的靶向整合与非预期结果(如易位和INDEL)之间的比率。预算允许的情况下，通过全基因组测序的方法进行全基因组序列的分析和比对更精细，如基于NGS的iGUIDE方法。北京定量脱靶检测评估标准

基因编辑可以‘指哪打哪’,四种脱靶检测方法。连云港基因编辑脱靶检测安全性评价

CAR或TCR修饰的免疫细胞对于嵌合抗原受体（Chimericantigenreceptor，CAR）或T细胞受体（Tcellreceptor，TCR）修饰的免疫细胞，应尽可能采用多种方法评估其靶点相关毒性和脱靶毒性风险。对于靶点相关毒性，应采用体外方法深入分析靶点在人体qiguan、组织和细胞中的表达分布情况，基因表达分析库和文献调研也可能会有助于阐明靶点在不同病理生理状态下的表达是否存在差异。应采用表达和不表达靶抗原的细胞作为靶细胞进行体外试验，确认CAR或TCR修饰的免疫细胞可特异性的识别和杀伤靶细胞。对于CAR修饰的免疫细胞，应采用多种体外方法评估其胞外抗原识别区的脱靶风险。连云港基因编辑脱靶检测安全性评价