在临床应用中，免疫组化还可以进一步分类不同qi官与组织交界处cancer。由于重叠的特征，在一些组织qi官交界处的cancer，只凭组织学基础对cancer进行分类很困难。如胃肠道梭形细胞肉瘤是肌肉起源的平滑肌肉瘤，是间质起源的胃肠道间质瘤(GIST)，还是神经起源的神经鞘瘤;同样发生于组织交界处的cancer有睾丸胚胎cancer与精原细胞cancer，两者较难区别，且医疗与预后明显的不同，但用免疫组化检测角蛋白就较易于区别:角蛋白阴性则为精原细胞cancer，而角蛋白阳性则为胚胎cancer。免疫组化的那些小知识，都在这里！江苏大鼠免疫组化
免疫组化结果要如何分析？
（1）阳性着色细胞计数法。在40*光镜下，随机选择不重叠的10个视野，机器或人工计数阳性着色细胞，每组3~6张不同动物组织切片，然后进行组间比较即可。
（2）灰密度分析法。可以通过在不同组别和不同动物组织切片上选择相同区域、相同条件下用image j进行灰密度分析，然后进行统计分析即可。
（3）评分法。用光学显微镜下对组织切片分别按染色程度（0~3分为阴性着色、淡黄色、浅褐色、深褐色）、阳性范围进行评分（1~4分为0~25%、26~50%、51~75%、76~100%），**终可以分数相加，再进行比较。对于以上这几种方法，各有利弊，请细心选择。要想得到正确结果的前提是你要做出着色均匀、背景很浅的高质量切片。
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免疫组化实验注意事项总结：
Ø本实验室所用切片一般是石蜡切片。
Ø烘片：使蜡片水分蒸发，石蜡软化，组织切片牢固贴在玻片上；烘片至跟烘片前透明度有差异。
Ø抗原修复时，使片子始终浸没在修复液中，液体不能干。
Ø一抗孵育在37度培养箱，湿盒放置1h，省时间和结合效果好，不要超过1h，容易过染。
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Ø二抗使用：两个二抗放大信号或一个二抗；若抗体信号强，可不用放大信号，尽量增大信噪比。
Ø10XDAB在常温溶解，尽可能现用现配，放于4度储存时间久了效果不佳。
Ø复水和脱水时所用的梯度酒精不可混用，要区分开。
Ø加抗体和显色液时，都要将片子甩干，在半干半湿的状态下再加，不然容易造成溶液的二次稀释。
Ø整个操作过程中在显色之前，一定不能干片。
免疫组化染色呈阴性结果的原因有哪些？
1、抗体浓度和质量问题以及抗体来源选择错误。不是抗体浓度越高就越易出现阳性结果，抗原抗体反应有前带和后带效应，必须摸索比较好浓度。
2、抗原修复不全，对于甲醛固定的组织必须用充分抗原修复来打开抗原表位，以利于与抗体结合；建议微波修复用高火4次*6min试试。有人做过实验，这是比较好的时间和次数。若不行，还可高压修复。
3、组织切片本身这种抗原含量低。
4、血清封闭时间过长。
5、DAB孵育时间过短。
6、细胞通透不全，抗体未能充分进入胞内参与反应。
7、开始做免疫组化，建议一定要首先做个阳性对照片，排除抗体等问题。 常见的免疫组化方法有哪些？
病理医师日常工作中经常说的一句话应该就是“做个免疫组化吧”；不管是临床医师，还是患者，他们问的多的问题则是“为什么要做免疫组化？”病理医师通过“特殊染色”来进行细胞的识别。这一做法的依据是特定细胞和组织中的成分不同、则化学性质不同，通过染色的方法则可以呈现不同颜色。不过，由于组织固定或储存等，会造成相应物质的活性降低甚至消失，因而限制了特殊染色方法的应用。随着免疫学研究的进展，根据抗原与相应抗体间特异性结合的性质，则有了现在免疫组化的方法：不同细胞、不同组织中抗原有一定差异，抗体与被测组织中的特定抗原结合，进而通过一定显色方法将结合的抗体显示出来。如有相应显色，则证实可能有被测抗原；无显色则可能无被测抗原。当然，这一方法中需注意相应的“例外”，如抗体的非特异性结合、非特异性显色，则容易造成“假阳性”；或者虽有相关抗原、但所用抗体与该抗原并未结合等，则容易造成“假阴性”。随着免疫组化的应用经验的增加，这些问题在常规应用中尽量得以避免，前者如各种显色方法的优化；后者如抗原修复方法的优化、新型抗体开发及选择。英瀚斯生物，组织包埋、切片、染色、免疫组化拍照、报告分析，一站式搞定！湖南大鼠免疫组化检测
病理免疫组化多少钱？江苏大鼠免疫组化
免疫组化中IHC vs ICC的区别。英瀚斯生物为您说明。除了生物学来源，IHC和ICC在样品处理的程度上也有所不同。ICC需要透化，要么通过固定过程，要么是单独的透化步骤，这样抗体才能与细胞内的靶点相结合。而IHC可能不要单独的透化步骤，这取决于切片的厚度和固定方法。包埋在石蜡中的IHC切片必须进一步处理，才能进行抗体染色。一旦处理好样品，IHC和ICC的染色操作就几乎没什么差异了。当然，就染色而言，根据所使用的抗体来优化还是少不了的。江苏大鼠免疫组化
