RNA结合蛋白-RNA复合物的免疫沉淀(RIP)免疫沉淀方法:
1.制备RIP免疫共沉淀缓冲液。每次免疫沉淀需要900μL的RIP免疫沉淀缓冲液。每个反应在860µL的RIP洗涤缓冲液中加入35μL的0.5MEDTA和5µL的RNase抑制剂。
2.将第二节第10步中的试管放在磁性分离器上,并丢弃上清液。在每根试管中加入900µL的RIP免疫共沉淀缓冲液。3.快速解冻RIP裂解液,在4℃下以14000rpm离心10分钟。取出100µL的上清液,加入RIP免疫沉淀缓冲液中的每个磁珠-抗体复合物。免疫共沉淀反应的ZUI终体积将为1.0mL。
4.取出10µL的RIP裂解液上清液,并将其放入一个新的试管中,并贴上“input”的标签。将该样本存储在-80°C,直到开始RNA纯化(第四节)。这表示“10%的input”,将用于生成标准曲线或用于RT-PCR方法的比较(实时或终点)。
5.取出10µL的RIP裂解液上清液,通过蛋白印迹法检测目标RNAbinding蛋白的表达。将10µL的2XSDS-PAGEloading缓冲液加入到10µL的RIP裂解液中,然后在95°C下加热。RIP裂解液可直接应用于SDS-PAGE。
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进行RIP-qPCR实验,应该注意以下几个关键问题,以确保实验的成功和准确性。1. 样本处理:确保样本新鲜且未受污染,避免RNA降解。在处理过程中使用无RNase的试剂和耗材,并在冰上操作以维持低温环境。2. 抗体选择:选择特异性强的抗体进行免疫沉淀,这是实验成功的关键。验证抗体的特异性和效力,以确保准确捕捉目标RNA-蛋白质复合物。3. 引物设计:设计特异性针对目标RNA的引物,避免非特异性扩增。确保引物的质量和纯度,以获得可靠的qPCR结果。4. 实验对照:设置适当的对照实验,如使用非特异性抗体作为阴性对照,以验证实验结果的特异性和准确性。5. 操作规范:严格遵守RNA操作规范,避免RNA酶的污染。确保实验环境的清洁和无菌,以减少误差和干扰。6. 数据分析:使用适当的统计方法和软件分析实验数据,确保结果的准确性和可靠性。注意识别并排除异常值,以获得真实可信的结果。综上所述,进行RIP-qPCR实验时,你应注意样本处理、抗体选择、引物设计、实验对照、操作规范和数据分析等关键问题。通过仔细考虑和遵循这些注意事项,可以提高实验的成功率和准确性。贵州RNA免疫共沉淀RIP Sequencing检测RIP-seq和RIP-qPCR实验有哪些异同点。
RIP-Seq检测和RIP-qPCR验证要点:
实验设计:尽量进行实验组别设计和生物学重复检测,提高后续验证的阳性率。常规过表达单组(AbIPvsIgGIP);动态互作组学(实验组vs对照组vsIgG组)。根据目的设计适当的生物学重复。如果后续以RIP-Seq数据进行互作组标准分析,则需要3-4组生物学重复;如果后续以寻找关键互作RNA,进行深入的机制研究,则建议1-2次生物学重复。经验显示单次重复假阳性率达90%。RIP-Seq强烈建议设置实验组别和生物学重复检测。
蛋白表达和细胞量:细胞用量要不少于5e7(金标准:320g离心细胞量50μl,保障项目用量)。本底低表达蛋白,建议使用过表达组进行检测。蛋白表达可根据WB结果或初步根据数据库判定。
抗体关键质控:抗体特异性与亲和效价要求高,尽量采用标签抗体或经过CoIP效果验证的抗体。抗体质量参差不齐(WB能检测到预期条带不到1/2,能检测到良好结果的不到1/4)和存在非特异性结合(几乎所有的抗体都存在非特异结合,部分非特异结合条带远大于目的条带),RIP-Seq需做WB和IP-WB质控。抗体可参考数据库。
互作蛋白筛选和验证:数据分析以信号强度作为强阳筛选,以文献查阅,功能匹配,批量RIP-qPCR验证,提高验证成功率。
RIP实验RNA纯化方法:
制备蛋白酶K缓冲液。每个免疫沉淀需要150µL蛋白酶K缓冲液,包含117µLRIP洗涤缓冲液,15µL10%SDS,18µL10mg/mL蛋白酶K。
在150µL的蛋白酶K缓冲液中悬浮每个免疫沉淀。
将第三节第4步的input样品解冻,在试管中加入107µLRIP洗涤缓冲液、15µL10%SDS和18µL蛋白酶K,使体积提高到150µL。
将所有试管在55°C下摇晃孵育30分钟以消化蛋白质。
孵育后,将管短暂离心,并将管放置在磁分离器上。将上清液转移到一个新的试管中。
在上清液的试管中加入250µLRIP洗涤缓冲液。
在每根试管中加入400µL的苯酚:氯仿:异戊醇。涡旋15秒,在室温下以14000rpm离心10分钟,以分离相位。
取出350μL水相,将其放入新管中。加入400µL的氯仿。涡旋15秒,在室温下以14000rpm离心10分钟,以分离相位。
取出300μL的水相,然后放入一个新的试管中。
在每根试管中加入50µL盐溶液I、15µL盐溶液II、5µL沉淀增强剂和850µL无水乙醇。混合并在-80°C下保持1小时至过夜,以沉淀RNA。
在4°C下以14000rpm离心30分钟,小心丢弃上清液。
用80%的乙醇清洗沉淀一次。在4°C下以14000rpm离心15分钟。小心地弃出上清液,晾干沉淀。重新悬浮在10到20µL的无RNase的水中,并将管子放在冰上。 做好RIP-qPCR实验,应该注意哪些关键问题。
RIP(RNA结合蛋白免疫沉淀)和ChIP(染色质免疫沉淀)实验在多个方面存在明显的区别:研究对象:RIP实验主要研究细胞内RNA与蛋白质的相互作用,关注RNA结合蛋白与特定RNA分子的结合情况。ChIP实验则主要关注DNA与蛋白质的相互作用,特别是染色质上的蛋白质与DNA序列的结合。实验原理:RIP实验基于RNA分子与RNA结合蛋白在特定条件下(如紫外照射下)可以发生耦联效应。通过利用特异性抗体将RNA-蛋白质复合物沉淀下来,然后回收其中的RNA进行分析。ChIP实验则是利用特异性抗体与染色质上的蛋白质结合,然后通过洗涤和洗脱步骤将结合的DNA纯化出来,进行高通量测序或其他分析。技术应用:RIP实验是研究转录后调控网络动态过程的有力工具,可以帮助发现miRNA的调节靶点。ChIP实验则常用于研究基因表达调控、转录因子结合位点、染色质修饰等。综上所述,RIP和ChIP实验在研究对象、实验原理、实验操作、优化条件和技术应用等方面存在明显差异。如果RIP-qPCR实验失败了,该怎么办。湖北RNA蛋白相互作用检测RIP-Seq检测
RIP实验是一种用于研究RNA与蛋白质相互作用的重要技术。根据实验目的和应用场景,RIP实验分为多个分类。福建RNA蛋白相互作用检测RIP-RT-PCR检测
RNA结合蛋白免疫沉淀(RIP)是一种重要的分子生物学实验技术,其应用场景主要集中在以下几个方面:1.细胞内RNA与蛋白结合情况的研究:RIP可以用于研究细胞内RNA与特定蛋白质的结合情况,揭示RNA在基因表达调控、转录后修饰、蛋白质合成等过程中的作用。2.RBP与非编码RNA的相互作用研究:非编码RNA,如长链非编码RNA(lncRNA)和微小RNA(miRNA)等,在基因表达调控中起着重要作用。RIP技术可以用于发现和研究RBP(RNA结合蛋白)与非编码RNA的相互作用,有助于深入理解非编码RNA的功能和调控机制。3.全基因组范围的RNA与RBP相互作用图谱的绘制:通过RIP技术,可以绘制全基因组范围的RNA与RBP相互作用图谱,从而揭示RNA与蛋白质的相互作用网络,为理解基因表达的复杂调控机制提供重要依据。福建RNA蛋白相互作用检测RIP-RT-PCR检测