HE染色组织样本水化:将浸泡过二甲苯的待测组织样本先放入无水乙醇中浸泡5min,使脱蜡时用的二甲苯可以被洗脱出去,使水可以进入组织中;再依次置于95%、85%、70%乙醇中各浸泡5min以达到充分水化的效果。组织切片苏木素染色、分化与反蓝:将水化后的组织样本的切片使用PBS溶液浸泡清洗,每次浸泡5min,总共清洗3次。之后用移液***吸取已经预先配制好的苏木素染色液,每个组织切片滴加100ul,充分染色10min。染色完毕后使用蒸馏水洗去多余的苏木素染色液。然后再使用1%的盐酸乙醇进行分化,使细胞核中结合过多的染液和细胞浆中的多余的染液被除去。分化完成后,再用双蒸水将组织切片冲洗干净。为了使苏木素染蓝色,使用弱碱性的促蓝液加入组织切片中,让细胞核染蓝色。反蓝结束后先用清水进行清洗,再用双蒸水将组织切片冲洗干净。HE染色观察细胞形态变化。云南比较好的HE染色分析
HE染色伊红溶液中加入少量的冰醋酸(一般小于10%就行),可改变组织等电点,促进伊红与胞浆蛋白质结合,其本身不参与染色的反应。当苏木素染色效能极高,很短时间就导致核浆共染时,可适当地添加冰醋酸(一般不超过2%),抑制苏木素染色效能,方便控制染色时间,同时也能提高苏木素染色的清晰度。现在有商用的HE染色液卖,但是质量参差不齐。如果课题组较大,完全可以自己配制,效果也挺好。配制为乙酸浓度5%-7.5%和盐酸浓度为0.5%-1%的苏木素溶液放置一周,即可完全成熟,染色效果好,氧化膜和结晶都很少(一般苏木素中酸度越低越容易产生氧化膜和结晶,这也是提示更换苏木素的标志之一)。云南比较好的HE染色分析脾脏组织HE染色如何观察。
HE染色法的话,不能准确说出细胞器的颜色,实验记录或考试时只能说染色效果为 :细胞核蓝色,胞质、肌纤维、胶原纤维和红细胞呈深浅不一的红色。或者详细说明如下:细胞核被苏木精染成鲜明的蓝色,软骨基质、钙盐颗粒呈深蓝色,粘液呈灰蓝色。细胞浆被伊红染成深浅不同的粉红色至桃红色,胞浆内嗜酸性颗粒呈反光强的鲜红色。胶原纤维呈淡粉红色,弹力纤维呈亮粉红色,红血球呈橘红色,蛋白性液体呈粉红色。苏木精染液为碱性 ,主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色 ;伊红为酸性染料 ,主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色。
HE染色不管怎么操作,始终无法染色或淡染答:这种情况一般因为组织固定时采用了酸性甲醛;或者组织在甲醛中浸泡时间太长;或者久置的甲醛变性分解为甲酸。补救:防患于未然,要么使用新鲜的中性甲醛固定,要么在存放的甲醛中加一点碳酸钠中和甲酸。对于已经固定的组织可考虑再次固定;对于已经制出的片子,染色前采用5%重铬酸钾溶液浸泡半小时以上,然后自来水漂洗5min,可改善染色。也可以将切片放入3%硫酸铁铵溶液中,补充染色媒介,增强苏木素与组织的亲和力(苏木素染色必须要媒介才能染上,单纯的苏木素与组织的亲和力很弱)。HE染色是常见的病理染色,是比较基础是病理染色之一。
HE染色切片中出现类似色素样的点状结晶和黑色光滑的细胞核原因:切片封片前放置在空气中时间太长,以至于二甲苯挥发切片干燥所致。对策:移去组织切片上的盖玻片和封固剂,重新处理。将切片水洗数分钟,然后重新脱水、透明、封固。封片过程中要保持组织切片的轻度湿润,尽量不要让其干燥。细胞核呈红、棕色改变原因:苏木精染色液过度氧化和切片在苏木精染液染色后返蓝不足。对策:首先,每次染色之前检查苏木精染色液的染色能力,发现氧化过度应及时更换。其次,可用流水、温水或弱碱性溶液如稀氨水、0.2%碳酸氢钠等,在苏木精染色后,给切片以足够的蓝化时间。HE染色原理 试剂 染色步骤 注意事项 。浙江值得信赖的HE染色外包
HE染色试验技术及注意事项。云南比较好的HE染色分析
HE染色全名为苏木精和伊红染色方法,是**基本的病理学染色技术。由于组织或细胞的不同成分对苏木精的亲和力不同及染色性质不一样。经苏木精染色后,细胞核及钙盐粘液等呈蓝色,可用盐酸酒精分化和弱碱性溶液显蓝,如处理适宜,可使细胞核着清楚的深蓝色,胞浆等其它成分脱色。再利用胞浆染料伊红染胞浆,使胞浆的各种不同成分又呈现出深浅不同的粉红色。故各种组织或细胞成分与病变的一般形态结构特点均可显示出来。质量好的HE具备条件1.细胞核与细胞浆蓝红相映,鲜艳亮丽;2.胞核鲜明、核膜、核染色质颗粒均清晰可见;3.组织或一般结构特点及假物质成分均能显示出来。云南比较好的HE染色分析
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