HE染色法，。苏木精染液为碱 ，主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色 ；伊红为酸染料 ，主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色。而线粒体用HE染色不可见，活细胞通常要求活细胞近似无色线粒体需要用健那绿来染色，再在高倍镜下观察。从人或动物新鲜尸体上取下块（一般厚度不超过0.5厘米）投入预先配好的固定液中（10%福尔马林，Bouin氏固定液等）使、细胞的蛋白质变凝固，以防止细胞后的自溶或细菌的分解，从而保持细胞本来的形态结构。一般用由低浓度到高浓度酒精作脱水剂，逐渐脱去块中的水份。再将块置于既溶于酒精，又溶于石蜡的透明剂二甲苯中透明，以二甲苯替换出块的中酒精，才能浸蜡包埋。海马组织HE染色如何观察。宁夏推荐的HE染色
HE染色注意事项：1、染色时调节pH值很重要。如果组织块在福尔马林中固定时间长，组织酸化而影响细胞核着色。因此，要在自来水中冲洗时间长一些或在饱和碳酸锂水溶液中处理10-30min，这样可以使细胞核着色较深。染伊红时胞浆着色不佳，可在伊红溶液中滴加1-2滴冰醋酸。2、切片染苏木精后，分色这一步是关键，应在显微镜下控制进行，一般以细胞核染色清楚（晰）而细胞质基本无色为佳。如果过分延长分色时间将导致染色太浅，应重新染色后再行分色。3、切片经酒精脱水后，入二甲苯时可出现白色不透明状态，此为脱水不彻底，应将切片退回无水酒精，更换酒精、二甲苯，以求彻底脱水与透明。4、在染色过程中不要让切片干燥，以免切片收缩、变形，影响神经元形态。5、切片从二甲苯取出或进入二甲苯前，切片周边均应擦干净或吸干多余水分。6、***封固时，要用中性树脂，防止日后褪色，盖片要选大于组织块的面积，如漏出一部分不久将会褪色，所用树脂浓度要适当，树脂封固时不能有气泡。河北比较好的HE染色HE染色，即是苏木精-伊红染色法，是形态学比较常用的染色方法。
HE染色常见问题：成片的染色模糊不清，灰染答：（1）组织未及时固定，部分自溶；或固定不佳，深部组织未处理到。这种只能重新固定了。（2）尽管乙醇也是一种固定液，但尽量少用或不用，因为其会导致组织发硬变脆，染色效果不好。（3）包埋时蜡的温度过高，或切片后烤片时间和温度过久过高都不好，可能会导致无法染色。（4）脱蜡不彻底；染料有问题；分化过度导致的颜色变淡，镜下组织界限不清；染完后的脱水和透明不佳，水雾残留在组织上。（5）通风窗中（防止空气中的水雾），戴口罩操作封片（减少哈气带来的水雾）。
HE染色多聚甲醛保存组织的注意事项：多聚甲醛放置过久其中的醛基可能会被氧化为酸，使溶液pH降低，从而影响染色。不同细胞或组织样品所需的固定时间有所不同，应当根据细胞或组织的种类以及组织块的大小来调整固定时间。多聚甲醛虽然作用温和，但能硬化组织，固定时间过久会导致组织变脆，切片时易碎。因此固定时间通常不宜超过24小时。多聚甲醛可长期存在于固定过的细胞或组织样品中，固定完成后用适当的洗涤液或水冲洗数小时仍会有残留，因此后续实验结果如果受醛基影响，须尽量洗去残留的多聚甲醛。醛基与抗原蛋白的氨基交联形成羧甲基，使抗原决定簇的三维构象出现空间障碍。分子间交联形成的网格结构可能部分或完全掩盖某些抗原决定簇，使之不能充分暴露，可造成假阴性的染色，影响免疫组化结果。因此，4%多聚甲醛固定的细胞或组织样品在进行免疫组化检测时，有时需要对抗原先进行修复，然后才能进行免疫染色等后续操作。HE染色结果如何分析和读片？
HE染色显微镜下见切片内有大量水珠分析以及应对原因：切片经梯度乙醇处理后没有完全脱水，导致二甲苯透明中性树胶封固后残留大量水分。对策：移去盖玻片，用二甲苯溶解封固剂如中性树胶。将切片置入新鲜的无水乙醇中，待切片重新脱水完全后，用新二甲苯透明，中性树胶封固。所有用于脱水和透明的液体，在使用一定时间以后，应即时更换。光镜下切片某些区域难以聚焦分析以及应对原因：盖玻片上可能有封固切片的封固剂。对策：移去盖玻片，重新用干净的盖玻片封片HE染色的基本原理和结果分析。吉林结果客观的HE染色检测
HE染色过程中常见的问题以及应对方法。宁夏推荐的HE染色
HE染色就是用苏木精和伊红对细胞内的核糖体和细胞质染色的方法。H:Hematoxylin，苏木精E:Eosin，伊红苏木精（Hematoxylin,H）是一种碱染料，可将细胞核和细胞内核糖体染成蓝紫色，被碱染料染色的结构具有嗜碱。伊红（，E）是一种酸染料，能将细胞质染成红色或淡红色，被酸染料染色的结构具有嗜酸。染色前，须用二甲苯脱去切片中的石蜡，再经由高浓度到低浓度酒精，***入蒸馏水，就可染色。 很多细胞在新生时期胞浆对伊红着色较淡或轻度嗜碱，当其衰老时或发生退行变则呈现嗜伊红浓染。 胶原纤维在老化和出现透明变时，伊红着色由浅变深。宁夏推荐的HE染色
