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免疫组化基本参数
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免疫组化企业商机

免疫组化临床应用中,可以对传染性疾病诊断。应用抗病毒、细菌、zhen菌和寄生虫抗原的特异性抗体进行免疫组化染色,可以检测和诊断许多传染性疾病病原微生物,如乙型肝炎病毒(HBV)、巨细胞病毒(CMV)、人乳T状瘤病毒(HPV)、疱疹病毒(HSV)、丙型肝炎病毒(HVC)、细小病毒B19、人禽流行性感冒病毒(AIV)、严重急性呼吸综合征冠状病毒(SARS)等等,由于免疫组化在传染性疾病诊断中具有及时性、低风险性、高敏感性、特异性、有效性等特点,可以用于(1)用于人类新病原微生物的识别;(2)提供快速的形态学诊断,使严重传染性疾病得以早期医疗;(3)在无法取得新鲜组织或尚无培养方法的情况下,提供诊断并对发病机制进行研究和认识。英瀚斯生物专业做实验外包服务,一站式医学科研平台。英瀚斯生物,专业病理老师负责免疫组化外包!做得好的免疫组化要多久

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免疫组化的基本原理 

免疫组化(Immunohistochemistry, IHC)是一种利用抗原-抗体特异性结合的原理,通过显色反应在组织切片上定位特定蛋白质的技术。该技术结合了免疫学和组织学的优点,能够在细胞或亚细胞水平上精确显示目标蛋白的分布和表达情况。免疫组化的基本原理是利用一抗与目标蛋白结合,再通过二抗与一抗结合,通过显色系统(如DAB)使目标蛋白可视化。这种方法不仅能够提供蛋白质的定位信息,还能通过半定量分析评估蛋白质的表达水平。 免疫组化免疫组化常见问题原因分析!

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免疫组化的优缺点

免疫组化的优点在于其高特异性和敏感性,能够在组织原位检测目标蛋白的表达和分布。此外,免疫组化可以与其他技术(如荧光显微镜、电子显微镜)结合,提供更丰富的信息。然而,免疫组化也存在一些缺点。首先,实验步骤复杂,需要优化多个参数(如一抗浓度、孵育时间)。其次,免疫组化的结果可能受到组织固定、抗原修复等因素的影响,导致假阳性或假阴性结果。此外,免疫组化的定量分析相对困难,通常只能进行半定量分析。

免疫组化指的是根据抗体与抗原特异结合的原理来检测组织切片中的抗原(如蛋白)。immuno的词根来自操作中所使用的抗体,而histo意味着组织。另一种类似的技术是免疫细胞化学(Immunocytochemistry,简称ICC)。这两个词大家经常混着用,看着好像差不多,但实际上还是有点区别。IHCvsICC对于IHC,组织是来自患者或动物,经过冷冻或石蜡包埋。将这些组织制成约4μm厚的切片,封片后再处理。通过这种方法,研究人员可观察细胞组分的定位,同时维持周围组织的原先结构。对于ICC,大部分细胞外基质及其他基质组分被去除,只剩下整个细胞来染色。ICC的来源可以是细胞悬液,来自患者或动物(如血涂片、拭子等),或在实验室中进行的组织培养细胞系。 英瀚斯生物,可做免疫组化定量分析。

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免疫组化染色呈阴性结果的原因有哪些?

1、抗体浓度和质量问题以及抗体来源选择错误。不是抗体浓度越高就越易出现阳性结果,抗原抗体反应有前带和后带效应,必须摸索比较好浓度。

2、抗原修复不全,对于甲醛固定的组织必须用充分抗原修复来打开抗原表位,以利于与抗体结合;建议微波修复用高火4次*6min试试。有人做过实验,这是比较好的时间和次数。若不行,还可高压修复。

3、组织切片本身这种抗原含量低。

4、血清封闭时间过长。

5、DAB孵育时间过短。

6、细胞通透不全,抗体未能充分进入胞内参与反应。

7、开始做免疫组化,建议一定要首先做个阳性对照片,排除抗体等问题。 如何做好免疫组化实验?免疫组化

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免疫组化结果要如何分析?

 (1)阳性着色细胞计数法。在40*光镜下,随机选择不重叠的10个视野,机器或人工计数阳性着色细胞,每组3~6张不同动物组织切片,然后进行组间比较即可。

(2)灰密度分析法。可以通过在不同组别和不同动物组织切片上选择相同区域、相同条件下用image j进行灰密度分析,然后进行统计分析即可。

(3)评分法。用光学显微镜下对组织切片分别按染色程度(0~3分为阴性着色、淡黄色、浅褐色、深褐色)、阳性范围进行评分(1~4分为0~25%、26~50%、51~75%、76~100%),**终可以分数相加,再进行比较。对于以上这几种方法,各有利弊,请细心选择。要想得到正确结果的前提是你要做出着色均匀、背景很浅的高质量切片。


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