热迁移分析(Cellular Thermal Shift Assay, CETSA)是一种研究靶点与药物在细胞水平结合情况的技术。其原理是药物结合会改变靶蛋白的热稳定性。传统的CETSA依赖蛋白质印迹法检测,通量低。现在,通过与均相发光免疫检测(如Alpha)结合,开发出了均相CETSA(简称CETSA® HT)。该方法将细胞在不同温度下加热后裂解,使用针对目标蛋白的抗体对(偶联Alpha供体/受体珠)检测溶液中剩余的未聚集的天然蛋白量。通过比较药物处理组与对照组的蛋白热稳定性曲线偏移,即可高通量地确认化合物是否与细胞内靶点结合,并评估结合强度。均相化学发光的检测速度如何,能否满足快速诊断需求?浙江均相化学发光均相发光优点
报告基因(如荧光素酶、β-半乳糖苷酶)是研究基因表达调控的常用工具。传统的报告基因检测通常需要细胞裂解和底物孵育多步操作。均相发光报告基因检测系统通过使用具有细胞膜渗透性的“前底物”(pro-substrate)或优化反应条件,实现了“一步加样”检测。例如,某些荧光素酶底物配方稳定,可直接加入含有细胞的培养液中,细胞裂解和酶反应同时发生,化学发光信号在数分钟内达到平台期并稳定数小时,便于在微孔板中连续或批量读取。这极大简化了基于报告基因的高通量药物筛选和信号通路研究流程。山东第五代化学发光均相发光应用领域均相化学发光技术如何降低检测误差,确保准确性?
在临床诊断和生物研究中,经常需要同时检测一个样本中的多个指标。均相发光技术可以通过多种策略实现多重分析。空间编码:在不同的微孔或区域进行不同检测。光谱编码:使用发射不同波长荧光的多种受体(如不同镧系元素供体搭配不同颜色受体),通过检测不同波长通道的信号来区分不同靶标。时间编码:利用具有不同荧光寿命的供体。Alpha技术中也可以使用发射不同波长荧光的受体珠。这些多重均相检测方案能够在单次反应中获取更多信息,节省样本和试剂,提高检测效率。
研究蛋白-蛋白相互作用(PPI)对于理解细胞信号网络至关重要。传统的酵母双杂交、免疫共沉淀等方法操作复杂、通量低。以Alpha技术为表示的均相发光方法彻底改变了这一局面。将靶蛋白A与供体珠偶联,互作蛋白B与受体珠偶联。当A和B在溶液中相互作用时,拉近两珠产生信号。该方法可在纯化蛋白、细胞裂解液甚至活细胞培养基中进行,不只能验证已知互作,更能用于高通量筛选破坏或促进特定PPI的小分子化合物。其均相特性使得可以实时监测互作动力学,研究互作强度,为药物发现和基础生物学提供了强大工具。体外诊断新机遇!均相发光新产品,助您抢占先机!
GPCR是比较大的药物靶点家族,其功能研究涉及配体结合、第二信使产生、下游信号通路活化等多个层面。均相发光技术多方面渗透于此领域。对于配体结合竞争实验,可采用TR-FRET,将受体标记供体,配体标记受体。对于GPCR活化后比较关键的cAMP积累或IP3/DAG产生,均有成熟的均相检测试剂盒。例如,cAMP检测常采用基于抗体竞争原理的均相发光免疫分析。细胞裂解后,内源性cAMP与加入的标记cAMP竞争结合有限量的抗cAMP抗体。抗体结合事件通过FRET或Alpha技术被检测,信号强度与内源性cAMP浓度成反比。这类方法直接在细胞裂解液中进行,快速、灵敏,完美契合GPCR激动剂/拮抗剂的高通量筛选。均相发光技术研究进展,浦光生物为您提供前沿资讯!均相发光
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除了基于荧光的能量转移,均相检测也可利用化学发光能量转移(CRET)。在CRET中,供体是化学发光反应(如鲁米诺-过氧化物酶反应)产生的激发态分子,其发出的光能直接激发邻近的荧光受体发出更长波长的光。通过设计使受体标记在结合事件的另一方,即可实现均相检测。电化学发光(ECL)也可用于均相模式。例如,将三联吡啶钌标记在一方,另一方标记上能够在其电极氧化还原循环中起共反应物作用的物质(如三丙胺)。当两者因生物识别事件靠近时,电化学触发的高效ECL反应得以发生,产生强信号。这些方法进一步拓展了均相发光的技术边界,提供了更多样化的信号输出选择。浙江均相化学发光均相发光优点
双光子显微镜结合了激光扫描共聚焦显微镜和双光子激发技术的特点。双光子激发技术的基本原理就是用两个波长较长的光子去激发一个荧光分子。由于光波波长较长,可实现成像深度超过600微米。那么问题来了,什么情况下可以用两个光子激发一个光子,实现能量叠加呢?答案是:提高光子密度。在进行双光子成像时,物镜焦点处的光子密度是高的,双光子激发只发生在物镜的焦点附近很小的区域内,邻近区域不产生荧光,因此不需要针空过滤信号,提高了信号收集效率。目前双光子成像在生物医学领域广范应用于深层组织成像以及火体成像等。美国斯坦福大学、日本东京大学、陆军军医大学脑科学研究中心等专业实验室利用双光子显微成像技术进行了信息识别、行...