浸蜡包埋:等量二甲苯与软蜡1次，软蜡2次，硬蜡2次，以上各级每次1-1.5小时，用纸盒或金属包埋盒包埋。切片贴片烤片:载玻片上涂少许蛋白甘油，切片厚度6-8微米，在贴片容器中贴片，入37。C恒温箱中烘烤24小时。脱蜡入水:二 甲苯2次，每次10min,****酒精中2次,每次5min,****以下的浓度每次2min,下行至蒸馏水。 以下程序按教材要求进行。注意事项: 在0.5%的盐酸酒精中分色过程中，数秒后，必须要在显微镜下镜检，见细胞核呈蓝色，细胞质呈无色或灰色即可。此步骤非常关键， 一定要不间断镜检。 常规病理切片主要仪器设备有哪些？**组胚病理切片产品介绍
制作病理切片固定。小块组织固定法:这是很常用的方法，从人体或动物体取下的小块组织，须立即置入液态固定剂中进行固定，通常，标本与固定液的比例为1:4~20，但组织块不宜过大过厚，否则固定液不能迅速渗透。故取组织块的大小一般为2.0cm×2.0cm×0.3cm。注射、灌注固定法:某些组织块由于体积过大或固定液极难渗入内部，或需要对整个脏器或整个动物体进行固定。这时宜采用注射固定或灌注固定法。将固定液注入血管，经血管分支到达整个组织和全身，从而得到充分的固定。 香港直销组胚病理切片病理切片的种类规格有哪些？
病理切片的制作需要取一定大小的病变组织，用病理组织学方法制成病理切片〔通常将病变组织包埋在石蜡块里，用切片机切成薄片，再用苏木精-伊红(H-E)染色〕,用显微镜进一步检查病变。 病变的发 展过程，***作出病理诊断。 病理切片的制作 1.制作病理切片取材 (1)材料新鲜:取材组织愈新鲜愈好，人体组织一般在离体后，动物组织在处死后迅速固定，以保证原有的形态学结构。 (2)组织块的大小:所取组织块较理想的体积为2.0cm×2.0cm×0.3cm，以使固定液能迅速而均匀地渗入组织内部，但根据制片材料和目的不同，组织块的较理想体积也不同，如制作病理外检、科研切片，其组织块可以薄取0.1~0.2cm即可，这样可以缩短固定脱水透明的时间，若制作教学切片厚取0.3 ~0.5cm，这样可以同一蜡块制作出较多的教学切片。 (3)勿挤压组织块: 切取组织块用的刀剪要锋利，切割时不可来回锉动。夹取组织时切勿过紧，以免因挤压而使组织、细胞变形。 (4)规范取材部位: 要准确地按解剖部位取材，病理标本取材按照各病变部位、性质的不同，根据要求规范化取材。
制作病理切片浸蜡、包埋：使石蜡浸入组织中，取代组织中含有的透明剂。包埋:将浸蜡后的组织置于融化的固体石蜡中，石蜡凝固后，组织即被包在其中，称蜡块，此过程称为包埋。制作病理切片切片和贴片：修整蜡块:可视其组织的大小，在组织边缘约0.1~0.2cm处，切去余蜡部分，否则易造成组织皱缩不平。准备好切片用具:切片刀、毛笔、眼科镊子(弯)、漂烘温控仪。安装蜡块:将修好的蜡块安装在金属或木制持蜡器上。安装切片刀:将切片刀安装在切片机的刀台上，把刀台上的紧固螺丝旋紧，使切片时不产生振动，能保持一定的切片厚度。 病理切片的取材好坏影响切片质量。
制作病理切片染色和封片 常用的染色方法是苏木素-伊红(Hematoxylin-Eosin)染色法，简称H.E染色法。这种方法对任何固定液固定的组织和应用各种包埋法的切片均可使用。苏木素是一种碱性染料,可使组织中的嗜碱性物质染成蓝色，如细胞核中的染色质等;伊红是一种酸性染料，可使组织中的嗜酸性物质染成红色，如多数细胞的胞质、核仁等在H.E染色的切片中均呈红色。 H.E染色程序如下:脱蜡、脱苯、复水、染色、脱水、透明、封固 常规苏木素染色中的对比染色是用伊红,近年来在英、美家的一些实验室则采用焰红(phloxine),此外也有用桔黄G(OrangeG)、比布里希猩红(Biebrich scarlet)、波尔多红(Bordeaux red)等作为对比染色。伊红为染胞质、胶原纤维、肌纤维、嗜酸性颗粒等常用的染料。病理切片什么情况下需要加项检测？**组胚病理切片性价比出众
病理切片一般用在什么地方？**组胚病理切片产品介绍
病理切片操作规范：巨检结束后点清块数，记录签收。组织包埋完成后进行清点蜡块数量。大标本固定时间不得少于6小时；小标本不得少于3小时。固定液必须及时更换，固定后必须流水冲洗。固定、脱水温度不得高于37℃。包埋用石蜡必须过滤。试剂必须及时更换。切片刀必须锋利，用力均匀，切片厚度3—5微米。切片完整无污染，无皱褶。胃镜、穿刺等小活检组织切片必须作连续性切片，数量不得少于8张。组织片贴附，应在除去标签位置后玻片的中间。封固前必须经酒精充分脱水，二甲苯透明，湿封。
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