酶的校正：要满足在同一方法学、同一测定条件、与理论计算的FACTOR值差异不大，没有发现有明显影响因素，方可 进行校正。检验结果溯源性，得建立一个可靠的参考系统作为准确性基础，然后将准确性转移到常规方法测定中去，使常规方法测定结果可溯源到参考系统所提供的准确性基础上来。在实现溯源性目标过程中，永远以患者新鲜标本为实验对象，以方法学对比试验方法为验证手段。方法学对比试验常采用回归方程进行统计分析，假如斜率接近1，截距较小，这意味着实验室常规方法对标本测定结果和溯源目标参考系统对标本检测结果非常接近。科研实验中试剂取用应注意事项：取用少量的液体—使用胶头滴管。内源性亲和素-生物素封闭试剂盒
试剂盒实验遇到复孔该怎么办。在设计复孔检查时，提出问题：是对同一个样品作两次稀释，再别离加到板上的两个孔，仍是只稀释一次，然后罗致两次别离加到两个孔？前者好像把稀释时的过错也考虑到了，但做出来的成果两个孔相关挺大的。在实验中设复孔，意图是为了削减本次实验的体系过错对实验数据带来的影响，所以应该用第二种，有条件的话复孔的数量能够添加，体系过错更小。选用后者。假定在实验室阶段，或许需求屡次稀释，然后将不同稀释次数的别离做复孔，以便检查稀释进程中带来的过错；假定同一次稀释的复孔一起的存在检测差异大，或许板的均一性存在必定问题（打扫操作因素）。假定不同稀释次数差异大，阐明稀释方法有问题。K-EDTA(0.1mol/L,pH7.4)但若加入酸，碱的量多时，缓冲溶液就失去了它的缓冲作用。
稳定转染细胞的筛选：1、转染48 h后，用含适当浓度的潮霉素B筛选培养基来传代细胞（直接传代或者稀释后传代）。注意：细胞处于活跃分裂状态时的杀伤效果较好。但细胞过于稠密，其效率会降低，较好将细胞稀释至丰度低于25%。2、每隔3-4天更换含有药物的筛选培养液。3、筛选7天后观察并评估细胞克隆（集落）的形成情况。集落的形成可能还需要一周或者更多的时间（取决于宿主细胞类型，转染，以及筛选效果）。4、挑取并转移5-10个抗性克隆于35mm细胞培养板，继续用含药物的筛选培养液维持培养7天。5、后续更换正常培养基培养即可。
hochest染色和DAPI染色有什么区别：1、每个染料有自己独特的激发谱线和发射谱线.这也是以上两个染料的主要区别. 另外Hoechest 33258 是膜透性的,因此在活细胞时候能轻松进入;DAPI是半透性的,有选择性的进入.因此Hoechest 33258 一般用来染活细胞,可以长驱直入;DAPI一般是染固定细胞.2、两者都可以用紫外看，参见以下的激发发射波长Hoechst 33258的较大激发波长为346nm，较大发射波长为460nm；Hoechst 33258和双链DNA结合后，较大激发波长为352nm，较大发射波长为461nm。DAPI的较大激发波长为340nm，较大发射波长为488nm；DAPI和双链DNA结合后，较大激发波长为364nm，较大发射波长为454nm。检测试剂盒第二个影响洗刷作用的主要参数是洗刷循环的量。
试剂空白吸光度是反映试剂质量的指标之一，但不能反映试剂质量的全部。试剂成份、纯度、用量及稳定性，才是保证试剂质量的关键所在。目前市售的一些试剂具有抗干扰作用，主要是通过加入抗干扰物质或使用新的色素原以避免内源性物质的干扰。但值得注意的是：一些试验项目在消除内源性物质干扰的同时，会带来样品含量真实性的变化。 线性范围变窄 现象：高值测不高。原因：生产试剂时有效成分投料量不足;试剂成份稳定性较差。灵敏度变低现象：酶促反应速度曲线斜率下降，测定结果有严重系统误差。原因：试剂底物浓度不足。PBS：PBS粉剂每袋加ddH2O定容至1000mL，调pH7.2，高压灭菌，4℃保存备用。内源性亲和素-生物素封闭试剂盒
液体试剂可以减少某些药物的刺激性。内源性亲和素-生物素封闭试剂盒
标准物质在计量学中的作用：标准物质所提供特性量值的不确定度必须已知且满足测量需求。因此，标准物质可以按不确定度等级（越小越好，但评定必须合理）和依据不确定度报告的可靠性和验证结果进行分级分类。在物理计量中，测量标准一般按层级水平划分。测量基准的不确定度小且处于计量溯源层级的高大上，次级标准通过与一个或多个基准直接比较导出或验证，依此类推。这个层级体系用来建立测量系统的准确度。这些测量系统用工作标准校准，而工作标准则用参考标准校准，依此类推。理想情况下，所有这些溯源链止于基准。通过这个过程，就可校正测量系统的重要偏差，同时，测量不确定度追溯至基准的不确定度和相关比较测量的不确定度。内源性亲和素-生物素封闭试剂盒
