pH缓冲溶液有何用途：（1）pH测量前标定校准pH计。（2）用以检定pH计的准确性，例如，用pH=6.86和pH=14.00，标定pH计后，将pH电极插入pH=9.18溶液中，检查仪器显示值和标准溶液的pH值是否一致。（3）在一般精度测量时检pH计是否需要重新标定。pH计标定并使用后也许会产生漂移或变化，因此在测试前将电极插入与被测溶液比较接近的标准缓冲液中，根据误差大小确定是否需要重新标定。（4）检测pH电极的性能。如何配制pH标准缓冲溶液：对于一般pH测量，可使用成套的pH组冲试剂（可配制250mL），配制溶液时，应使用去离子水，并预先煮沸15～30分钟，以除去溶解的二氧化碳。剪开塑料袋将试剂倒入烧杯中，用适量去离子水使之溶解，并冲洗包装袋，再倒入250mL容量瓶中，稀释至刻度，充分摇匀即可。见光易分解的试剂（如硝酸银）应装在棕色瓶中。T4 DNA连接酶缓冲液(10×)
试剂盒实验遇到复孔该怎么办。在设计复孔检查时，提出问题：是对同一个样品作两次稀释，再别离加到板上的两个孔，仍是只稀释一次，然后罗致两次别离加到两个孔？前者好像把稀释时的过错也考虑到了，但做出来的成果两个孔相关挺大的。在实验中设复孔，意图是为了削减本次实验的体系过错对实验数据带来的影响，所以应该用第二种，有条件的话复孔的数量能够添加，体系过错更小。选用后者。假定在实验室阶段，或许需求屡次稀释，然后将不同稀释次数的别离做复孔，以便检查稀释进程中带来的过错；假定同一次稀释的复孔一起的存在检测差异大，或许板的均一性存在必定问题（打扫操作因素）。假定不同稀释次数差异大，阐明稀释方法有问题。猪血浆常用荧光显微镜观测,可以透过完整的细胞膜。
液体培养基接种向肉膏蛋白胨液体培养基中接种少量菌体时，其操作步骤基本与斜面接种时相同，不同之处是挑取菌体的接种环放入液体培养基后，应在液体表面处的管内壁上轻轻磨擦，使菌体从环上脱落，混进液体培养基，塞好试管塞后，摇动液体，使菌体在液体中分布均匀，或用试管振荡器混匀。向液体培养基中接种量大或要求定量接种时，可将无菌水或液体培养基注入菌种试管，用接种环将菌苔刮下，再将菌种悬液以无菌吸管定量吸出加入，或直接倒入液体培养基。如果菌种为液体培养物，则可用无菌吸管定量吸出加入或直接倒入液体培养基。整个接种过程都要求无菌操作。
筛选：筛选之前:由于每种细胞对G418的敏感性不同，而且不同的厂家生产的相同浓度的G418的活性不尽相同，所以在筛选之前，一定要确定G418的适合筛选浓度。具体如下：将细胞稀释到1000个细胞/mL，在100ug/mL~1mg/mL的G418浓度范围内进行筛选，选择出在10~14天内使细胞全部死亡的低G418浓度来进行下一步的筛选试验。由于每种细胞对G418的敏感性不同，一般变动在100ug/ml～1000ug/ml范围。而且不同的厂家生产的相同浓度的G418的活性不尽相同，所以在筛选之前，一定要确定细胞对这一批G418的适合筛选浓度。尽管如此，特性明确的细胞系G418的适合用量还是稳定的。《分子克隆》给出了几个常用细胞系所需G418的适合用量。检测试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡15-30分钟后方可运用。
从试剂瓶取用试剂，用左手持量筒（或试管），并用大姆指指示所需体积刻度处。右手持试剂瓶（注意：试剂标签应向手心避免试剂沾污标签），慢慢将液体注入量筒到所指刻度。读取刻度时，视线应与液体凹面的低处保持水平。倒完后，应将试剂瓶口在容器壁上靠一下，再将瓶子竖直，以免试剂流至瓶的外壁。如果是平顶塞子，取出后应倒置桌上，如瓶塞顶不是扁平的，可用食指和中指（或中指和无名指）医学教育|网搜集整理将瓶塞夹住（或放在洁净的表面皿上），切不可将它横置桌上。取用试剂后应立即盖上原来的瓶塞，把试剂瓶放回原处，并使试剂标签朝外，应根据所需用量取用试剂，不必多取，如不慎取出了过多的试剂，只能弃去，不得倒回或放回原瓶。以免沾污试剂。杀灭曲线的建立：按照20-25%的细胞密度将未转化的细胞铺在合适的培养板上。胰蛋白酶抗原修复试剂盒
每种细胞对G418的敏感性不同，一般变动在100ug/ml～1000ug/ml范围。T4 DNA连接酶缓冲液(10×)
试剂空白吸光度是反映试剂质量的指标之一，但不能反映试剂质量的全部。试剂成份、纯度、用量及稳定性，才是保证试剂质量的关键所在。目前市售的一些试剂具有抗干扰作用，主要是通过加入抗干扰物质或使用新的色素原以避免内源性物质的干扰。但值得注意的是：一些试验项目在消除内源性物质干扰的同时，会带来样品含量真实性的变化。 线性范围变窄 现象：高值测不高。原因：生产试剂时有效成分投料量不足;试剂成份稳定性较差。灵敏度变低现象：酶促反应速度曲线斜率下降，测定结果有严重系统误差。原因：试剂底物浓度不足。T4 DNA连接酶缓冲液(10×)
