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糖原pas染色液配制及使用方法：1、常规固定，常采用 10%的福尔马林，常规脱水包埋。 2、石蜡切片脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。 3、自来水冲洗 2～3min，再用蒸馏水浸洗 2 次。 4、入过碘酸溶液，室温放置，一般不宜超过 10min。 5、自来水冲洗 1 次，再用蒸馏水浸洗 2 次。 6、入 Schiff Reagent，置于室温阴暗处浸染。 7、自来水冲洗 10min。 8、入苏木素染色液，染细胞核。 9、酸性乙醇分化液分化。 _x000c_10、自来水冲洗 10～15min，更换蒸馏水清洗，使其返蓝。 11、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。巨幼红细胞贫血、溶血性贫血、再障的幼红细胞PAS染色为阴性。江西糖原染色试剂盒服务电话

注意事项：染色前：①切出的石蜡切片要好，不能有皱褶或者刀痕，切片不能太厚。②捞片时，较好一张玻片捞一个组织，组织较好位于玻片的中间，美观的同时也利于脱蜡（有时二甲苯的液面低于组织片的时候，达不到脱蜡的目的）。③石蜡切片脱蜡到水时，一定要注意组织切片脱蜡务必要彻底（脱蜡时间不能太少）以使脱蜡后的组织达到真正的“干净”。否则剩余的未脱干净的石蜡粘附在组织表面，在染色时染色液未能充分与组织接触，较终导致染色效果不佳，甚至染不上颜色。④在染色过程中较好不要在玻片上贴标签纸，以避免脱蜡时把标签纸也浸没，致使标签纸上的胶黏到玻片上，造成染色不佳。山东糖原染色试剂盒量大从优过碘酸将血细胞内的糖原氧化，生成醛基。

糖原染色试剂：本试剂盒适用于骨髓细胞涂片，血液细胞涂片，以及组织石蜡切片的染色检测。操作简单方便，1h内即可完成反应。PAS染色，全称过碘酸雪夫染色（Periodic Acid-Schiff Stain），主要用来显示糖原和其他多糖物质，因此也称作糖原染色。另外，此染色方法还可以显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、色素、淀粉样物质、基底膜、霉菌等。PAS法的检测原理在于：过碘酸（也成为高碘酸）是一种强氧化剂，能够氧化组织或者细胞中的糖原及有关物质中的1,2-乙二醇基，使其转变为二醛基。醛再与雪夫液中的无色品红结合产生一种紫红色的化合物，定位于胞浆上。

特殊染色方法选择应遵循：染色结果对比鲜明、结果易保存、阳性突出的染色方法；突出的阳性结果在于所选择方法表达的色调及如何进行背景的复染。结果能够长时间保存、不褪色对于后续的调阅、科研、论文均较为有利。如显示淀粉样物质，甲基紫染色法虽然流程较为简单，但结果不易保存，阳性对比度相对不突出；刚果红染色法阳性结果明显，长时间保存不褪色，流程简便，更是实用的方法。如显示弹性纤维，地衣红染色染液虽配制较方便，但结果对比度相对欠佳，与其他几个染色法相比，多不选择使用。帮助鉴别白血病细胞和腺骨髓转移的腺细胞，腺细胞呈阳性反应。

糖原染色在使用过程中需要注意以下几个方面：Schiff氏染液的配制是关键，尤其是偏重亚硫酸钠的质量，打开应是粉剂，且带有硫的气味，若成团或没有气味，则不能用，配制时使用的容器、药勺、称药天平与称药纸等必须洁净、无污染。新配制好的Schiff剂为无色透明液体[1]，配好后可分成小份置于-20℃保存，用时取一份恢复到室温即可。沈洪武等通过对比染色发现，冷冻保存1年的Schiff液的染色结果与新鲜配制的染色结果一致[5]。0.5％～1％高碘酸（pH值在3.0～5.0之间），环境温度以不高于20℃为宜，室温高时氧化时间适当缩短；如果染色时环境温度较高且高碘酸作用时间长，可使某些物质成分发生非特异反应，使染色结果出现假阳性。因此，室温较高时可适当缩短反应时间。自早幼粒阶段以后的粒细胞和幼单核细胞可呈弱阳性反应。山东糖原染色试剂盒量大从优

糖原的固定要及时，而且标本要新鲜。江西糖原染色试剂盒服务电话

糖原染色的原理与操作方法是什么：（1）原理：过碘酸将血细胞内的糖原氧化，生成醛基。醛基与雪夫液中的无色品红结合，形成紫色化合物，定位于细胞质中。（2）操作方法：干燥涂片，滴加甲醛固定液固定10分钟，流水冲洗，晾干。滴加过碘酸溶液作用20分钟，流水冲洗，晾干。滴加雪夫液作用60分钟，流水冲洗，晾干。滴加甲基绿溶液复染10分钟，流水冲洗，晾干镜检。细胞的组织化学方法，是研究细胞成分常用的方法之一。它是利用化学试剂与细胞内的某些物质进行化学反应，从而在细胞局部形成有色沉淀物，再通过显微镜对组织内的生物化学成分进行定性、定位、定量研究。江西糖原染色试剂盒服务电话

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