配制ph计的3mol/L的KCL溶液 ph计的ph电极在使用前都是被护套里的保护液保护着，是为了保持其原有的ph电势平衡不变，为了测量时会更加精确。这里面就是PH电极的保护液，即 3mol/L的KCL溶液。所以要自己学会如何配置，使ph电极浸泡在保护液里，这样就能快速回复其活性，又能很好的测量了。配制ph计保护液——3mol/L的KCL溶液步骤： 1、计算：KCL摩尔质量74.5g/moL, 则KCL质量＝3mol×74.5g/mol=223.5g； 2、 称量：用分析天平称量KCL=223.5g，注意分析天平的使用； 3、 溶解：在烧杯中用100ml蒸馏水使之完全溶解，并用玻璃棒搅拌； 4、 转移，洗涤：把溶解好的溶液移入1000ml容量瓶，用容量瓶瓶口较细的。科研实验中试剂取用应注意事项：取用一定量的液体—使用量筒。双链DNA中和缓冲液
检测试剂盒实验经验分析：吸取液体时，要用量程和需要量接近的去吸，减少误差。将液体加到酶标孔中时，避免头和孔内液体接触，可使头上的液滴和孔壁接触，液滴会自然流下去（应该是加样的时候，板上稀释不算的吧）。液体全部加完后，可将酶标板在桌子上平行轻轻晃动30秒，混匀液体。也可以用酶标仪的晃动功能（注意是平行晃动，即上下or左右）。温浴时，要用不干胶或胶带纸封好酶标板，防止水分的蒸发（老办法是放入湿盒内，纱布加点无菌水即可）。酸性磷酸酶封闭液(100×)倒入试管里溶液的量，一般不超过其容积的1/3。
取用液体试剂时要注意什么？从滴瓶中取用液体试剂时，要用滴瓶中的滴管，滴管决不能伸入所用的容器中，以免接触器壁而沾污药品。如用滴管从试剂瓶中取少量液体试剂时，则需用附于该试剂瓶的专门滴管取用。装有药品的滴管不得横置或滴管口向上斜放，以免液体流入滴管的橡皮头中。从细口瓶中取用液体试剂时，用倾注法。先将瓶塞取下，反放在桌面上，手握住试剂瓶上贴标签的一面，逐渐倾斜瓶子，让试剂沿着洁净的试管壁流入试管或沿着洁净的玻璃棒注入烧杯中。注出所需量后，将试剂瓶口在容器上靠一下，再逐渐竖起瓶子，以免遗留在瓶口的液滴流到瓶的外壁。
检测试剂盒操作注意事项：实验中不用的板条应立即放回包装袋中，密封保存，以免变质。严格按照说明书中标明的时间、加液量及顺序进行温育操作。洗涤酶标板时应充分拍干，不要将吸水纸直接放入酶标反应孔中吸水。试剂应按标签说明书储存，使用前恢复到室温。稀稀过后的标准品应丢弃，不可保存。所有液体组分使用前充分摇匀。加入试剂的顺序应一致，以保证所有反应板孔温育的。加入试剂的顺序应一致，以保证所有反应板孔温育的时间一样。使用干净的塑料容器配置洗涤液。使用前充分混匀检测试剂盒里的各种成份及样品。检测试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡15-30分钟后方可使用。
使用方法：1， 固定细胞或组织样品，经过固定后，适当洗涤除去固定剂。如果需要进行免疫荧光染色，可先进行免疫荧光染色，染完毕后再进行染色。如果不需要进行其它染色，则直接进行染色。 2， 对于贴壁细胞或组织切片，加入少量染色液，覆盖住样品即可。对于悬浮细胞，至少加入待染色样品体积 3 倍的染色液，混匀。 3， 室温染色 5-10 分钟。 4， 吸除染色液，生理盐水洗涤 2-3 次，每次 3-5 分钟。 5， 置于荧光显微镜下观察，激发波长 360-400nm。 溶液注意事项： dapi 被普遍认为具有致性，操作时应戴手套，并避免交叉污染。 本产品需避光，并尽量避免反复冻融。荧光染料都存在淬灭问题，建议染色后尽量当天完成检测。 为减缓荧光淬灭可以使用抗荧光衰减封片剂。固体试剂的取用:一支药匙不能同时取用两种或两种以上的试剂。尿蛋白定性检测试剂盒(乙酸法)
已知浓度的标准品、未知浓度的样品加入微孔酶标板内进行检测。双链DNA中和缓冲液
样品的溶血、脂血、黄疸等会对测定结果产生非化学反应的干扰。因此，应根据溶血、脂浊、黄疸的光谱吸收特性，采用双波长或多波长的检测模式，并在结果计算中扣除因溶血、脂血、黄疸引起的影响，减少干扰程度。每种待测物都有一个可测定的浓度或活性范围，样品结果若超过此范围，分析仪将显示结果超过范围的提示。表示试剂已经变质，应更换合格试剂。使用连续监测法、两点法测定酶活性时，若酶活性非常高，底物接近被耗尽，吸光度上升或下降会超过某一吸光度变化范围，监测期的吸光度将偏离线性，使测定结果不可靠。双链DNA中和缓冲液
