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荧光效率:荧光分子不会将全部吸收的光能都转变成荧光,总或多或少地以其他形式释放。荧光效率是指荧光分子将吸收的光能转变成荧光的百分率,与发射荧光光量子的数值成正比。荧光效率=发射荧光的光量分子数(荧光强度)/吸收光的光量子数(激发光强度)。发射荧光的光量子数亦即荧光强度,除受激发光强度影响外,也与激发光的波长有关。各个荧光分子有其特定的吸收光谱和发射光谱(荧光光谱),即在某一特定波长处有较大吸收峰和较大发射峰。选择激发光波长量接近于荧光分子的较大吸收峰波长,且测定光波量接近于较大发射光波峰时,得到的荧光强度也较大。免疫荧光技术可以用于研究疾病的发生机制和医治效果评估。HMGB1免疫

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细胞的固定及免疫荧光:注意事项:(1)取细胞爬片时,动作应轻柔,防止将细胞爬片夹碎,影响实验进程。(2)种细胞过程中,要注意将细胞轻柔混匀,“八”字或者“十”字形摇晃,防止细胞局部生长过密。(3)稀释、加二抗(荧光抗体)及此后的洗涤过程中注意避光。(4)细胞爬片进行免疫荧光之后,需要尽快拍照,防止免疫荧光淬灭。或者放于暗盒内,暂时保存于4度冰箱,尽快拍照。(5)在进行荧光显微镜拍照时,要根据荧光抗体选择合适的激发光源。PI/DAPI能将凋亡和未凋亡的细胞都染成红色/蓝色,只在凋亡的细胞核中才有FITC-12-dUTP掺入而定位的绿色荧光。collagenX(COL-10)免疫荧光荧光抗原法是利用已知的荧光标记物来追踪或检查相应抗体的方法。

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免疫学的基本反应是抗原-抗体反应。由于抗原抗体反应具有高度的特异性,所以当抗原抗体发生反应时,只要知道其中的一个因素,就可以查出另一个因素。免疫荧光技术就是将不影响抗原抗体活性的荧光色素标记在抗体(或抗原)上,与其相应的抗原(或抗体)结合后,在荧光显微镜下呈现一种特异性荧光反应。在此基础上又分为两种方法:直接法和间接法。直接法:将标记的特异性荧光抗体直接加到抗原上,经过一定时间反应,即可结合并显色。间接法:先用抗原的抗体(一抗)与抗原反应结合,再用荧光标记的二抗(一抗的抗体)与抗原反应,形成抗体-抗原-抗体复合物。

细胞的固定及免疫荧光:1)吸除培养基,一般先加入PBS浸洗细胞 3 次,每次 5 min。2)向孔内加入4%多聚甲醛1ml,进行细胞固定,室温固定20分钟。3)吸去多聚甲醛,使用PBS浸洗 3 次,每次 5 min。4)向孔内加入0.5%Triton X-100(PBS配制)室温通透20min,目的是使细胞通透。5) 除去Triton X-100,使用PBS浸洗 3 次,每次 5 min。6)用10%的与二抗同源的山羊血清(PBS配制)或者5%BSA封闭2小时(选择的封闭液与后面操作过程中抗体稀释液一致)。封闭后不需要用PBS清洗。7)吸去封闭液,向每孔滴加足够量适宜浓度的一抗(一次使用抗体可以根据抗体说明书推荐浓度,后续实验可以摸索抗体的适宜浓度),4℃湿盒内孵育过夜。免疫荧光技术可以用于研究环境污染和毒物作用。

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免疫荧光实验步骤:1.样本准备:细胞或薄组织。对单层生长细胞,在传代培养时,将细胞接种到预先放置有处理过的盖玻片的培养皿中,待细胞接近长成单层后取出盖玻片,PBS洗两次;对悬浮生长细胞,取对数生长细胞,用PBS离心洗涤(1000rpm,5min)2次,用细胞离心甩片机制备细胞片或直接制备细胞涂片。2.固定:取适当的固定剂固定样本。一般用4%PFA固定4℃过夜。固定完毕后的样本可置于含叠氮纳的PBS中4℃保存3个月。3.洗涤:PBS洗涤5min*3次。4.打孔:选择合适的通透剂处理样本,目的是使抗体更容易进入细胞与抗原结合。使用已知荧光抗原标记物质来检查相应抗体的方法被称为荧光抗原技术。X Hu Nuclei免疫组化IHC

免疫荧光技术在生物医学研究中具有普遍的应用前景。HMGB1免疫

细胞和组织样品处理:准备荧光标记的细胞样品:为实现较佳的图像质量,首先应建立针对目的蛋白和细胞结构的研究,同时将其他一切背景等排除在图像之外。固定和破膜细胞样品用于标记–首先将细胞结构、蛋白和核酸固定,然后使荧光染料和抗体渗入到细胞内部,标记目的靶点。封闭细胞样品,防止荧光标记物与研究无关的蛋白非特异性结合,较大限度提高信噪比。蛋白封闭液有助于减少非特异染色。抗体能够取代封闭蛋白与其表位形成高亲和力结合,而封闭液可防止样品中的低亲和力结合。HMGB1免疫

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