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免疫荧光的制作:样品准备(贴壁细胞、悬浮细胞以及组织等):对于贴壁细胞:先将洁净的盖玻片在70%乙醇中进行浸泡处理,然后用干净无菌的镊子放置到培养皿中,用无菌PBS洗去残留的乙醇。待细胞接近长成单层后取出盖玻片,操作小心,防止细胞脱片。对于悬浮细胞:有2种方法,①先在悬浮液中进行固定步骤,然后把细胞滴加在载玻片上,干燥后细胞会紧贴在载玻片上。②先在悬浮液中进行固定和染色步骤,离心洗脱,然后用移液管移至盒式玻片进行后续染色步骤。对于冷冻切片:切片放置在载玻片上后,可以直接进行固定等后续操作。对于石蜡切片:免疫荧光中石蜡切片较少,要先进行脱蜡和抗原修复处理。免疫荧光技术是基于免疫学、生物化学和显微镜技术的重要方法之一。PCNA免疫组化IHC

PCNA免疫组化IHC,免疫

免疫荧光通透(目的是使抗体进入胞内),0.5%TritonX-100(一种去垢剂,用PBS配制)室温通透20min(针对胞内抗原,若是细胞膜上表达的抗原则省略该步骤);除了TritonX-100,也可作为通透剂,并且固定后的样品不需要通透。封闭(减少一抗和二抗与非特异位点进行结合),通透后用PBS浸洗玻片3次,每次3min,吸水纸吸干PBS,在玻片上滴加山羊血清,室温封闭30min。常用的封闭液包括:与二抗同一来源的血清、BSA或者是羊血清。从封闭开始所有的步骤,一定要注意样品的保湿,避免样品的干燥,否则极易产生较高的背景。醛类固定的样品,在用一抗孵育前用含0.3M甘氨酸的封闭液进行封闭。PCNA免疫组化IHC荧光抗体技术可以用于检测和定位细胞或组织中的特定抗原物质。

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细胞免疫荧光简单实验步骤如下:1. 漂洗血清蛋白H7、2-7、4 37度 PBS 2小时。2. -20度甲醇固定20分钟后,自然、干燥 10分钟。3. PBS洗净:3min×3。4. 1%Triton:25 min~30 min、配成50 ultriton+5 mlpBS。5. PBS洗净:2×5 min。6. 羊血清封闭:37度,20分钟。7. 一抗,4度过夜,一般要大于18小时或者37度,1-2小时。8. 4度PBS洗净,3 min×5次。9. 二抗37度小于一小时。10. 37度 PBS洗净,3×5 min。11. 凉干封片(封闭液PH8.5);不管采用何种方法,在使用PBS缓冲液漂洗时,都要漂洗干净并且要测下pH值,可以使用PBS多清洗几次,也可以延长PBS清洗时间,如果结果背景较高可以延长漂洗的次数和时。

荧光效率:荧光分子不会将全部吸收的光能都转变成荧光,总或多或少地以其他形式释放。荧光效率是指荧光分子将吸收的光能转变成荧光的百分率,与发射荧光光量子的数值成正比。荧光效率=发射荧光的光量分子数(荧光强度)/吸收光的光量子数(激发光强度)。发射荧光的光量子数亦即荧光强度,除受激发光强度影响外,也与激发光的波长有关。各个荧光分子有其特定的吸收光谱和发射光谱(荧光光谱),即在某一特定波长处有较大吸收峰和较大发射峰。选择激发光波长量接近于荧光分子的较大吸收峰波长,且测定光波量接近于较大发射光波峰时,得到的荧光强度也较大。免疫荧光技术可以用于研究细胞内蛋白质的定位和表达水平。

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注意:从加荧光二抗起,后面所有操作步骤都尽量在较暗处进行.DAPI复染核:爬片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。切片稍甩干后在圈内滴加DAPI染液,避光室温孵育10min。封片:爬片置于PBS(PH7.4)中在脱色摇床上晃动洗涤3次,每次5min。玻片稍甩干后用抗荧光淬灭封片剂封片。镜检拍照:切片于荧光显微镜下观察并采集图像。(DAPI紫外激发波长330-380nm,发射波长420nm,发蓝光;FITC激发波长465-495nm,发射波长515-555nm,发绿光;CY3激发波长510-560,发射波长590nm,发红光)。两种抗体同时孵育:由于FIT容易萃灭,因此在孵育抗体时后孵育FITC二抗(孵育二抗一定要避光。免疫荧光技术可以用于研究遗传疾病和基因表达调控。VEGFR2免疫荧光IF

在实际工作中,荧光抗原技术应用较少,因此通常将其称为荧光抗体技术或免疫荧光技术。PCNA免疫组化IHC

细胞和组织样品处理:准备荧光标记的细胞样品:为实现较佳的图像质量,首先应建立针对目的蛋白和细胞结构的研究,同时将其他一切背景等排除在图像之外。固定和破膜细胞样品用于标记–首先将细胞结构、蛋白和核酸固定,然后使荧光染料和抗体渗入到细胞内部,标记目的靶点。封闭细胞样品,防止荧光标记物与研究无关的蛋白非特异性结合,较大限度提高信噪比。蛋白封闭液有助于减少非特异染色。抗体能够取代封闭蛋白与其表位形成高亲和力结合,而封闭液可防止样品中的低亲和力结合。PCNA免疫组化IHC

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