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T4UvsX重组酶在生产时由大肠杆菌表达和纯化,指的是利用分子生物学技术将T4UvsX重组酶的基因克隆到大肠杆菌(Escherichiacoli)中,然后通过大肠杆菌的生物合成机制来生产这种酶。具体过程如下:1.**基因克隆**:首先,科学家们会从T4噬菌体中分离出编码T4UvsX重组酶的基因。2.**载体构建**:将这个基因插入到一个质粒(一种小型、圆形的DNA分子)中,这个质粒可以作为载体,将目标基因导入大肠杆菌。3.**转化**:将含有T4UvsX基因的质粒转化到大肠杆菌细胞中。转化是指将外源DNA引入到细胞内的过程。4.**表达**:一旦质粒进入大肠杆菌细胞,它将开始表达T4UvsX基因,即利用大肠杆菌的核糖体和其他细胞机制来合成T4UvsX重组酶的蛋白质。5.**培养**:将转化后的大肠杆菌在适宜的培养基中培养,使其繁殖,从而增加T4UvsX重组酶的产量。6.**纯化**:培养一段时间后,收集大肠杆菌细胞,通过一系列生化方法(如离心、过滤、层析等)从细胞裂解物中提取并纯化T4UvsX重组酶。C5AR与其配体C5a结合后,可以激发多种免疫细胞,促进炎症反应和细胞趋化。Recombinant Mouse Nectin-2/CD112 Protein,His Tag

Recombinant Mouse Nectin-2/CD112 Protein,His Tag,标准物质

T4UvsX重组酶是一种来源于T4噬菌体的酶,它是RecA/Rad51家族的同源体。这种重组酶在双链DNA断裂的修复和复制叉重新启动的过程中起到重要作用。T4UvsX重组酶可以通过与其他DNA结合蛋白或辅助因子一起与单链DNA形成核酸蛋白复合物,并通过寻找与靶标DNA的互补区域进行杂交,以完成链置换反应。此外,T4UvsX重组酶在生产时由大肠杆菌表达和纯化。T4UvsX重组酶的产生过程涉及到基因工程和蛋白质表达的常规技术。首先,T4噬菌体的基因序列被识别并克隆到适合的表达载体中,然后这个载体被转化到大肠杆菌宿主细胞中。在宿主细胞内,T4UvsX基因被转录和翻译,产生重组酶蛋白。随后,通过一系列步骤包括细胞培养、蛋白质表达、细胞裂解、蛋白质纯化等,获得所需的T4UvsX重组酶。这一过程通常在生物技术实验室中进行,并且需要精确的分子生物学操作和蛋白质工程知识。

Phusion DNA Polymerase可以利用现有的计算工具,如CRISPR design tools,预测gRNA的活性和特异性,以辅助实验设计 。

Recombinant Mouse Nectin-2/CD112 Protein,His Tag,标准物质

1stStrandcDNASynthesisKit(RNaseH-)是一种用于合成互补DNA(cDNA)的试剂盒,它通过逆转录过程从信使RNA(mRNA)或总RNA模板合成cDNA的链。这类试剂盒通常包含逆转录酶(ReverseTranscriptase,RT)和其他必要的组分,以确保高效和准确的cDNA合成。RNaseH-表示该试剂盒使用的逆转录酶缺乏RNaseH活性,这意味着在合成cDNA链的过程中不会发生RNA的降解,从而可以产生更高产量的全长cDNA,特别是从较长的模板(可达13kb)。该试剂盒通常包括以下组分:-逆转录酶,如RevertAidHMinusM-MuLVReverseTranscriptase,它通过点突变完全消除了RNaseH活性。-RiboLockRNaseInhibitor,这是一种重组蛋白,可有效保护RNA在高达55°C的温度下不受RNases的降解。-缓冲液、dNTPs(去氧核苷酸三磷酸)和其他辅助成分,以支持cDNA合成反应。-有时还包括用于去除RNA样品中污染的基因组DNA的DNaseI。合成的cDNA可以作为PCR或实时PCR的模板直接使用,也适用于第二链cDNA合成或线性RNA放大。此外,可以在cDNA合成过程中加入放射性或非放射性标记的核苷酸,以便在包括微阵列在内的杂交实验中作为探针使用。

pA-Tn5转座酶是一种经过改造的高活性Tn5转座酶,与ProteinA融合,形成一种新型融合酶,应用于CUT&Tag技术中,用于研究蛋白质与基因组DNA的相互作用。这种融合酶具备以下特点:1.**高活性**:pA-Tn5转座酶是超高活性的突变形式,体外转座效率比野生型高1000倍。2.**ProteinA融合**:pA-Tn5转座酶的N端结构域为ProteinA的一部分,可以与免疫球蛋白的Fc区相互作用,特别是与大多数哺乳动物的IgG结合。3.**Tn5转座酶活性**:C端结构域为Tn5转座酶,能够特异性识别转座子两端反向重复的ME序列(MosaicEnd),并在形成转座复合体后随机插入靶DNA中。4.**应用广**:适用于CUT&Tag技术、高通量测序建库、ATAC-seq等,特别适用于早期胚胎发育、干细胞、以及表观遗传学等研究领域。5.**操作简便**:pA-Tn5转座酶的使用简化了实验步骤,可以在一步反应中实现DNA片段化和接头连接,从细胞到二代测序文库的转化过程需9小时。6.**低细胞投入量**:CUT&Tag技术允许从低至60个细胞的样本中获得结果,甚至可以应用于单细胞水平的研究。7.**高质量结果**:pA-Tn5转座酶的使用可以保证DNA片段化,同时获得的蛋白纯度高、核酸残留低。将Cas9/sgRNA复合物转染到目标细胞中。可以使用脂质体介导转染、电穿孔或其他转染技术 。

Recombinant Mouse Nectin-2/CD112 Protein,His Tag,标准物质

pA-Tn5转座酶是通过将ProteinA与Tn5转座酶进行融合来构建的。ProteinA是一种来源于金黄色葡萄球菌的蛋白质,它具有高亲和力结合大多数哺乳动物IgG抗体的Fc片段的能力。Tn5转座酶是一种能够识别特定DNA序列并在基因组上进行“剪切-粘贴”或“复制-粘贴”的酶。融合ProteinA的目的是为了在实验中实现对特定蛋白质的靶向。下面是pA-Tn5转座酶融合的一般步骤:1.**基因克隆**:首先,将Tn5转座酶的基因和ProteinA的基因克隆到一个表达载体中。这通常涉及到分子克隆技术,如PCR扩增、限制性内切酶消化和连接酶连接。2.**融合蛋白设计**:设计一个融合蛋白,其中ProteinA的基因序列和Tn5转座酶的基因序列通过一个短的连接肽(LinkerPeptide)相连。这个连接肽通常包含几个氨基酸残基,以确保两个蛋白部分在融合后仍能保持各自的构象和功能。3.**表达载体构建**:将融合基因插入到适合的表达载体中,这个载体应该包含适当的启动子、标记基因(如抗性基因)和终止子,以确保融合蛋白在宿主细胞中得到高效表达。4.**宿主细胞表达**:将构建好的表达载体转化到宿主细胞(如大肠杆菌)中,通过诱导表达融合蛋白。跨膜蛋白的多功能性使它们成为理想的药物作用靶点,例如四次跨膜蛋白CD20、Claudin18.2。Recombinant Mouse IL-2R gamma/CD132 Protein,His Tag

全长跨膜蛋白CB1它通过与G蛋白的相互作用,调节细胞内的第二信使系统,如cAMP水平。Recombinant Mouse Nectin-2/CD112 Protein,His Tag

荧光探针法是一种利用荧光标记的分子(即荧光探针)来检测和定量目标分子的方法。这种方法广泛应用于生物化学、分子生物学和医学诊断等领域。以下是荧光探针法的一些关键特点和工作原理:1.**荧光标记**:荧光探针是一类特殊的分子,它们含有可以发出荧光的化学基团(荧光团)。这些荧光团在受到特定波长的光激发时,会发出特定波长的光。2.**特异性结合**:荧光探针通常设计成能够特异性地与目标分子结合,如DNA、RNA、蛋白质或其他小分子。这种结合通常是通过分子间的互补性,如氢键、疏水作用或离子键等实现的。3.**信号变化**:荧光探针在结合目标分子前后,其荧光特性(如荧光强度、波长、寿命等)会发生改变。这种变化可以是增强或减弱,取决于探针的设计和环境条件。4.**检测原理**:-在**荧光共振能量转移(FRET)**中,两个不同的荧光团被设计成靠近,使得一个荧光团(供体)的能量可以非放射性地转移到另一个荧光团(受体)。当供体和受体之间的距离改变(如由于目标分子的结合)时,FRET效率会改变,从而影响荧光信号。-在**荧光增强或减弱**中,探针的荧光特性直接受到其与目标分子结合的影响。例如,某些探针在结合DNA后,其荧光强度会增强。Recombinant Mouse Nectin-2/CD112 Protein,His Tag

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使用BloodGenomicDNAIsolationKitwithMagneticBeads(血液基因组DNA提取试剂盒,磁珠法)进行血液样本中基因组DNA的提取,主要步骤如下:1.**实验准备**:准备抗凝全血样本(如EDTA抗凝血),移液器及无菌,15ml离心管,无水乙醇,70%乙醇,干净的吸水纸,涡旋振荡器,金属浴/水浴,台式离心机等。2.**样本处理**:取适量血液样本,根据试剂盒要求,可能需要将血液体积调整至特定量,例如200μl,并可能需要加入PBS缓冲液。3.**裂解血液细胞**:向血液样本中加入蛋白酶K和细胞裂解液,涡旋混匀后,置于金属浴或水浴中进行裂解,通常在65°C孵育10...

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