在PCR实验中,除了BsuDNAPolymerase,还有几种聚合酶适合高温扩增,包括:1.**TaqDNAPolymerase**:这是常用的PCR聚合酶,来源于Thermusaquaticus,能够在72°C的比较好活性温度下工作。它具有良好的热稳定性,可以承受PCR的热变性步骤,且中途不需要再添加酶。2.**PfuDNAPolymerase**:来源于Pyrococcusfuriosus,具有出色的热稳定性和3'→5'外切酶活性,提供校正功能,适用于对PCR保真性要求较高的实验,如基因筛选、克隆表达、突变检测、定点突变等。3.**VentDNAPolymerase**:来源于Litoralis栖热球菌,具有3'→5'外切酶活性,可以去除错配的碱基,具有校对功能,保真度比TaqDNAPolymerase高5~15倍。4.**KODDNAPolymerase**:来自Thermococcuskodakaraensis,具有高保真性和高热稳定性,保真性比PfuDNAPolymerase更高,优化后的PCR反应缓冲液能使得其扩增速度达到Taq酶的2倍、Pfu酶的5-6倍。5.**BstDNAPolymerase**:来源于Bacillusstearothermophilus,具有3'到5'外切割活性,适用于等温扩增反应,如LAMP技术,可在恒温下进行DNA扩增,无需繁琐的温度循环。CRISPR-Cas12a(以前称为Cpf1)是一种类II型V型内切酶,偏好富含胸腺嘧啶的原间隔短回文重复序列邻近基序。Physalaemin
BloodGenomicDNAIsolationKitwithMagneticBeads是一种利用磁珠技术从血液中提取基因组DNA的试剂盒。以下是一些关键特点和应用:1.**高效提取**:该试剂盒采用特殊的磁珠和缓冲体系,能够快速且高效地从100μl至1ml的血液中分离和纯化高质量的基因组DNA。2.**磁珠特性**:独特的磁珠具有很强的核酸亲和力,在特定条件下可以快速分离和纯化核酸。这些磁珠对磁场响应迅速,使得提取过程既安全又便捷。3.**提取过程**:血液样本在裂解液和蛋白酶K的作用下迅速裂解,释放出的基因组DNA与磁珠特异性结合。通过磁分离架的作用,磁珠与溶液快速分离,经过洗涤去除杂质,用洗脱液将基因组DNA从磁珠上洗脱下来。4.**应用广**:提取的基因组DNA可用于多种分子生物学实验,如PCR扩增、酶切、基因分型、Southern杂交、高通量测序、基因组DNA文库构建等。5.**操作简便**:整个抽提过程大约需要50分钟,操作简便,无需使用有毒有害的有机试剂,如酚或氯仿,提高了实验的安全性。6.**高纯度和高回收率**:提取的DNA纯度高,A260/A280通常在1.7-1.9之间,表明蛋白和RNA的污染低。回收率通常超过80%。
提取的DNA质量评估通常涉及以下几个方面:1.**纯度评估**:-**分光光度法**:通过测量DNA样本在260nm和280nm处的吸光度(OD值)来评估DNA的纯度。纯度可以通过OD260/OD280的比值来评估,对于纯DNA,这个比值通常在1.8左右。如果比值低于1.8,可能表明存在蛋白质污染;如果高于1.9,则可能存在RNA污染。此外,OD260/OD230的比值可以用来评估盐离子等杂质的残留,纯DNA的比值应在2.0-2.2之间。-**琼脂糖凝胶电泳法**:通过电泳分离DNA片段,根据DNA在凝胶上的迁移情况来评估其纯度。如果泳道口中存在较亮的条带,可能表明存在蛋白污染。2.**浓度评估**:-**紫外分光光度计**:使用紫外分光光度计测定DNA在260nm处的吸光度,根据比尔-朗伯定律(Beer-Lambertlaw)计算DNA的浓度。对于纯DNA,OD260的读数为1.0时,大约相当于50μg/mL的双链DNA。-**荧光定量法**:使用荧光染料结合DNA,通过测量荧光变化来定量DNA。这种方法比紫外分光光度法更敏感、精确,并且可能对特定的核酸有特异性。
T7EndonucleaseI(T7EI)是一种特殊的DNA内切酶,具有以下特点:1.**识别错配DNA**:T7EI能够识别并切割不完全配对的DNA、十字型结构DNA、Holliday结构或交叉DNA以及异源双链DNA。2.**切割位点**:T7EI切割错配位点5'端的、第二或第三个磷酸二酯键。3.**灵敏度**:T7EI对错配DNA的识别非常灵敏,能够检测并切割单碱基和多碱基的错配。4.**应用**:T7EI常用于CRISPR/Cas9等基因编辑技术导致的基因突变的鉴定。它通过识别错配DNA来帮助鉴定基因编辑是否成功以及是否有非目标效应。5.**直接电泳检测**:T7EI的产物可以直接通过电泳进行检测,这使得它在实验操作中更为方便。6.**来源**:T7EI来源于大肠杆菌菌株,是一种麦芽糖结合蛋白(MBP)和T7核酸内切酶I(T7EI)的融合蛋白。7.**成本效益**:尽管T7EI在商业上使用时成本较高,但它在大规模样本测试中,尤其是在基因突变鉴定方面,提供了一种有效的筛选方法。8.**特殊注意事项**:T7EI能够识别长度大于或等于2bp的插入、缺失或突变导致的错配DNA,但不能识别1bp的插入、缺失或突变。这些特点使得T7EndonucleaseI成为基因突变鉴定中一个非常有用的工具,尤其是在CRISPR/Cas9等基因编辑技术的应用中。Multiplex Probe qPCR Mix 已预混了低浓度ROX参比染料,适用于需要低浓度ROX校正的荧光定量PCR仪 。
Bst Plus DNA Polymerase (40 U/μL) 是一种从嗜热脂肪芽孢杆菌(Thermophilic Geobacillus sp)DNA聚合酶I衍生的酶,缺乏5'-3'外切核酸酶活性。以下是关于Bst Plus DNA Polymerase (40 U/μL)的一些关键信息:来源和特性:Bst Plus DNA Polymerase 具有更强的5'-3' DNA聚合酶活性、链置换活性和dUTP耐受性,适合用于抗污染的等温扩增反应,如LAMP和CPA等。应用:主要应用于等温DNA扩增,包括环介导等温扩增(LAMP)和其他等温扩增技术。规格:活性定义:1 U指的是在65°C下30分钟内将10 nmol的dNTP整合到酸不溶物质中的酶的量。溶液成分:包含10 mmol/L Tris-HCl、50 mmol/L KCl、0.1 mmol/L EDTA、1 mmol/L DTT、0.1% Triton X-100、50% 甘油,pH 7.5 @ 25℃。产品形式:提供的产品包括Hieff® Bst Plus DNA Polymerase (40 U/μL),货号14402ES,以及冻干粉形式的产品,货号14405ES,不含甘油。灵敏度和稳定性:Bst Plus DNA Polymerase 具有高灵敏度,低至5copies目的基因可测,且在飞克(fg)级别的模板量下也能快速达到阈值。在37°C下,该酶可以保持相对稳定的效应长达5天,并且在-20℃下可以稳定保存2年。储存条件:建议在-25℃至-15℃下储存,以保持产品活性,并避免反复冻融。泛素连接酶E3识别特定的靶蛋白,并促进E2上的泛素转移到靶蛋白的赖氨酸残基上,形成靶蛋白-泛素复合物。Recombinant Cynomolgus CRTAM Protein,His Tag
FnCas12a在完成特异性切割后,还能非特异性地切割其他单链DNA,这一特性被用于开发了多种核酸检测技术。Physalaemin
CUT&RUN和ChIC是两种用于研究蛋白质-DNA相互作用的技术,它们有一些关键的区别:1.**技术原理**:-**ChIC(ChromatinImmunocleavage)**:ChIC技术利用抗体将感兴趣的蛋白与ProteinA-MNase相结合来进行DNA切割。ChIC的优势在于使用TF特异性抗体系住MNase,并只在结合位点裂解。-**CUT&RUN(CleavageUnderTargetsandReleaseUsingNuclease)**:CUT&RUN技术则是在核的轻微MNase处理后释放单核小体和TF-DNA复合物,留下寡核小体。CUT&RUN通过在冰上进行简短的消化反应,在TF结合的MNase扩散到周边的基因组和裂解可接近的染色质之前在上清中恢复TF-DNA复合物。2.**操作步骤和简便性**:-**ChIC**:ChIC可能需要甲醛固定操作,这可能重新引入了ChIP-seq的一些问题,如交联导致的DNA和蛋白质的化学修饰。-**CUT&RUN**:CUT&RUN简化了操作步骤,使用磁珠固定细胞核,适用于新鲜和冷冻组织样本,缩短了生成DNA测序文库的时间(1-2天)。3.**背景信号和信噪比**:-**ChIC**:ChIC产生的背景信号可能较高,因为它可能涉及到非特异性的DNA切割。
使用BloodGenomicDNAIsolationKitwithMagneticBeads(血液基因组DNA提取试剂盒,磁珠法)进行血液样本中基因组DNA的提取,主要步骤如下:1.**实验准备**:准备抗凝全血样本(如EDTA抗凝血),移液器及无菌,15ml离心管,无水乙醇,70%乙醇,干净的吸水纸,涡旋振荡器,金属浴/水浴,台式离心机等。2.**样本处理**:取适量血液样本,根据试剂盒要求,可能需要将血液体积调整至特定量,例如200μl,并可能需要加入PBS缓冲液。3.**裂解血液细胞**:向血液样本中加入蛋白酶K和细胞裂解液,涡旋混匀后,置于金属浴或水浴中进行裂解,通常在65°C孵育10...