实验动物是研究疾病发生/防治机制、新型药物的基础，包括实验兔子、实验猴子、实验猪、实验青蛙、实验鼠等。其中，实验鼠是继人类之后第二种完成全基因组测序的哺乳动物，其基因组中拥有人类99%蛋白编码基因的同源基因，是目前应用较广阔的实验动物，具有繁殖数量多、发育快、性成熟早、妊娠期短、饲养成本低、实验重复性高、对外来刺激敏感、遗传信息清晰等优点。实验鼠在医学领域应用十分广阔，可用于微生物学领域，研究吸血虫、锥虫、支原体、沙门氏菌等微生物寄生虫致病原理；可用于免疫学领域，研究免疫缺陷机理和相关药物；可用放射学领域，研究放射线照射剂量和辐射效应；可用于药物筛选领域，筛选药物对疾病的作用，获得每种药物治疗效果；可用于安全测试领域，判断新产品安全性；可用于遗传学领域，研究遗传病基因结构和功能，构建人类遗传病动物模型；可用于老年学领域，探究抗老老药物效果。常州卡文斯实验鼠在行为学实验中表现稳定，数据可靠。db/m小鼠
净化利用受精卵透明带的屏障作用，结合体外受精和胚胎移植技术，可以去除目的品系小鼠所染的细菌、病毒、体内外寄生虫等，将小鼠微生物至SPF级及以上。卡文斯业务优势：1、净化成功率100%；2、IVF受精率，80%以上；3、双风系统动物房，IVC单独送风笼架，确保净化后代小鼠的等级安全；4、净化后代可无缝对接代理繁育业务。卡文斯冷冻保种与复苏业务详情目前主要的冻存方式是，胚胎冷冻和精子冷冻。其中精子冷冻复苏和胚胎冷冻复苏两种方法。其中精子冷冻复苏和胚胎冷冻复苏两种方法对比如下：冷冻方式精子冷冻胚胎冷冻用鼠量3只12W-24W可育成年雄鼠，0只雌鼠3只12W-24W可育成年雄鼠，30-40只雌鼠遗传物质数冻存至少20支麦管的精子液体冻存约400枚胚胎，每管冻存30-40枚胚胎技术特点精子复苏后通过IVF操作可一次性得到大量同日龄胚胎复苏后无需经过IVF操作，即可直接进行移植适用于杂合子或者纯背景的品系保种(比如B6/B适用于单基因/多基因纯合子或者特殊背景的品系保种*也可接收外来遗传物质进行复苏移植服务Wistar-Kyoto小鼠饲养管理常州卡文斯实验鼠的遗传背景清晰，实验数据更具可比性。
小鼠的抓取固定1.小鼠的抓取（1）右手提起小鼠尾巴，将其放在鼠笼盖或其他粗糙表面上（2）小鼠向前挣扎爬行时，再用左手拇指和食指抓住鼠耳和颈部皮肤抓取固定时需注意:过分用力,会使动物窒息或颈椎脱臼;用力过小,动物头部能反转来咬伤实验者的手。因此实验者必须反复练习,熟练掌握。2.小鼠的固定（1）徒手固定用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。固定板固定鼠麻醉后置小鼠固定板上，取仰卧位，用胶布缠粘四肢，再用针透过胶布扎在板上，从而将小鼠固定在小鼠固定板上。（3）固定架固定让小鼠直接钻入固定架里,封好固定架的封口,露出尾巴。此装置特别适用于小鼠尾静脉注射等。
SD(SpragueDawley）大鼠主要用途：广阔用于药理、毒理、药效及GLP实验，营养学及内分泌系统的研究。简介：1925年，美国斯泼累格。多雷(SpragueDawley)农场用Wistar大鼠培育而成。生长快，繁育性能好，大多用于安全性试验及营养与生长发育有关的研究。特点：头部狭长、尾长接近于身长，产仔多，生长发育较Wistar为快。10周龄时雄鼠体重可达300~400g,雌鼠达180~270g。性情比Wistar大鼠稍为凶猛。对疾病的抵抗力较强，尤其对呼吸道疾病的抵抗力很强。自发性肿块瘤体的发生率较低。对性内分泌物质敏感性高。长期睡眠剥夺的实验小鼠，其记忆力测试成绩较正常睡眠组明显降低。
ICR小鼠主要用途：已选为某些生物制品检定的法规动物。广阔用于药理、毒理、**、放射性、食品、生物制品等的科研、生产和教学。中国科学院遗传研究所在1973年从日本国立**研究所引进；1979中国医学科学院分院动物中心引进；1978年北京检定所引进；1983年上海计划生育研究所从瑞士苏黎世毒理学研究所引进。特点：远交系小鼠，毛色白化。适应性强，体格健壮，繁殖力强，生长速度快，实验重复性较好，雌鼠自发性畸胎瘤和管状腺瘤发病率为0%~1%，用氨基甲酸乙酯诱发时，11~16天胚胎期畸胎瘤和管状腺瘤发病率为5.9%，离乳个体管状腺瘤和囊瘤发生率为30%,孕鼠为3%。是国际通用的封闭群小鼠,我国从美国、日本、英国、瑞士等国引进的ICR，各群体之间在遗传特性方面不可避免地出现了一些差异，在应用时应注意。ICR/JCL小鼠是进行免疫药物筛选，复制病理模型较常用的实验动物。外周血象和骨髓细胞，具有较好的稳定性，是良好的血液学实验用动物。卡文斯实验鼠的遗传背景清晰，实验数据更具可比性。NOD-Scid小鼠饲养管理
卡文斯实验鼠在神经科学领域的研究中表现优异。db/m小鼠
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。实验动物常见的给用用药物使用方法法法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种。灌胃法小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入，二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。操作步骤：1.抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线。2.用1ml的注射器配灌胃针头。灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液。3.灌胃容积一般是0.1～0.2ml/10g，比较大0.35ml/10g，每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。db/m小鼠
