腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。常州卡文斯实验鼠的遗传背景清晰，实验数据更具可比性。肌萎缩侧索硬化小鼠多少钱一只
品系名称:ob/ob(I型糖尿病小鼠)品系编号:C000112品系背景:C57BL/6J品系描述:ob基因(0bese)为6号染色体隐性基因,瘦素基因突变，导致瘦素缺乏，纯合子导致单纯肥胖伴晚期糖尿病，平均产子5~8只;纯合突变小鼠4周龄时发生轻度肥胖，表现出高胰岛素血症和糖耐量受损，但没有形成糖尿病:4周之后体重迅速增加，多种代谢失调，表现出摄食过量，代谢减退体温下降，糖尿病样***综合症，糖耐量不良，血浆胰岛素升高,不育或不孕，创伤愈合能力受损，以及垂体和肾上腺***水平升高，身体脂肪含量增加，能量消耗和活动度降低，大约14月龄时死亡;纯合突变小无生育能力，所以必须用杂合子交配以保持此基因。应用领域:属常染色体隐性遗传Ⅱ型糖尿病动物，该小鼠肥胖症与人类的肥胖症很相似，利用这种小鼠曾进行了许多关于肥胖症的生化、症理、***及药物治疗等的研究。还包括腹部肥胖代谢综合征，非胰岛素依赖型糖尿病，瘦素缺乏或功能障碍，伤口愈合能力研究，生育缺陷。肠道肿瘤小鼠选择在社交互动实验中，抑郁模型实验小鼠与同伴的互动时间较正常组减少 60%。
实验鼠包括小鼠、大鼠、豚鼠、地鼠四大类。其中，小鼠占我国实验鼠市场份额比较高，约为79.3%；其次为大鼠，约占9.8%；地鼠排名第三，约占8.1%。近年来，随着医学研究水平不断提升，我国实验鼠需求日益增加，市场规模不断扩大。2018-2022年，我国实验鼠市场规模上涨31.7亿元，年复合增长率为28.2%，其中，2022年市场规模为50.3亿元，同比上涨27.3%。此外，随着我国多项医药创新驱动战略政策出台，创新药研究逐渐兴起，带动了实验鼠行业发展，实验鼠市场需求量进一步升高，行业发展态势良好。
实验鼠是指经人工培育，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或者来源清楚，用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的老鼠。实验鼠包括大鼠、小鼠、地鼠、豚鼠等，具有成熟早、繁殖能力强、对外来刺激敏感等特点。实验鼠是继人类之后第二种完成全基因组测序的哺乳动物，其基因组与人类高度同源，生理生化及生长发育的调控机理和人类基本一致，同时具有繁殖能力强、世代周期短、饲养成本低等特点，是目前应用较为广阔的实验动物之一，其他实验动物还包括实验猴子、实验兔子、实验猪等。随着基因工程技术的发展，特别是近年来以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术的普遍运用，使得大规模生产实验鼠成为可能，从而可以更加精细地模拟人类特定生理病理特征，在阐明生命机理规律、疾病诊断诊治完成完成疗程以及新药创制研发等方面具有不可替代的作用。卡文斯实验鼠品系丰富，满足不同科研项目的需求。
大鼠的抓取固定大鼠的抓取斯基本同小鼠，只不过大鼠比小鼠牙尖性猛，不易用袭击方式抓取，否则会被咬伤手指，抓取时为避免咬伤，可带上帆布手套。如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时，同样可采用左手固定法，只是用拇指和食指捏住鼠耳，余下三指紧捏鼠背皮肤，置于左掌心中，这样右手即可进行各种实验操作。也可伸开左手之虎口，敏捷地从后，一把抓住。若做手术或解剖等，则需事先麻醉或处死，然后用细棉线绳活缚腿，背卧位绑在大鼠固定板上；尾静脉注射时的固定同小鼠（只需将固定架改为大鼠固定盒即可）。注意事项：为了减少或避免大鼠在实验中发生的应激反应，以减少对实验者的攻击损伤，这里介绍几种抓取大鼠的技巧改进：（1）在抓取前可用一条清洁的毛巾蒙住大鼠全身，大鼠处于黑暗状态下神经会有所放松，看不到实验者的动作也会降低对实验者的攻击机会；（2）一般抓取大鼠都会抓住尾巴，但是有时大鼠尾巴不在身后而在其面前，这时实验者可能在抓取鼠尾的时候被大鼠攻击。这种情况一般可以轻推其腰臀部，使之变换姿势，待鼠尾调整到身后再进行抓取；（3）由于大鼠尾部被抓起时，会应激性地排便、排尿，所以比较好在粗糙表面上垫上报纸等，做好防范措施，减轻工作量。卡文斯实验鼠的标准化饲养环境减少实验变量干扰。高血压大鼠技术推广
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实验动物常见的给药物使用方法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结：1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定，注意头一定要固定好，头和躯体要保持一条直线，并且灌胃时使小鼠成竖直位，头向上。2.把握要领，动作尽量迅速，减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量：0.1ml/10g体重：一只20g的小鼠，一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线，太松会动，太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针，抵达咽部会有抵触感，小鼠会有吞咽动作，此时阻力丧失，可继续下行。肌萎缩侧索硬化小鼠多少钱一只
