小鼠的抓取固定1.小鼠的抓取（1）右手提起小鼠尾巴，将其放在鼠笼盖或其他粗糙表面上（2）小鼠向前挣扎爬行时，再用左手拇指和食指抓住鼠耳和颈部皮肤抓取固定时需注意:过分用力,会使动物窒息或颈椎脱臼;用力过小,动物头部能反转来咬伤实验者的手。因此实验者必须反复练习,熟练掌握。2.小鼠的固定（1）徒手固定用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。固定板固定鼠麻醉后置小鼠固定板上，取仰卧位，用胶布缠粘四肢，再用针透过胶布扎在板上，从而将小鼠固定在小鼠固定板上。（3）固定架固定让小鼠直接钻入固定架里,封好固定架的封口,露出尾巴。此装置特别适用于小鼠尾静脉注射等。常州卡文斯实验鼠的微生物检测报告确保无特定病原体传染。ApoE小鼠数量
BALB/c小鼠主要用途：广阔地应用于瘤肿化学、生理学、免疫学、核医学研究，以及单克隆抗体的制备等。但对致ai因子敏感。肺ai发病率雌性26％，雄性29％。对放射性照射极为敏感。广泛应用于瘤肿化学、生理学、免疫学、核医学和单克隆抗体等研究中。简介：1913年，贝格(Bagg)从美国商人欧希尔(Ohio)处购得的白化小鼠原种，以群内方法繁殖。麦克·多威尔(MacDowell)在1923年开始作近交系培育，至1932年达26代，命名为BALB/c品系。安德尔文特(Andervont)等人使BALB/c广为传播和应用。1985年我国从美国NIH引进到中国医学科学院实验动物研究所，为BALB/c第180代。特点：乳腺瘤肿化自然发生率低，但用乳腺瘤肿化病毒诱发时发病率高；卵巢、肾上腺和肺的瘤肿化在该小鼠有一定的发生率。易患慢性肺炎。对放射线甚为敏感。与其他近交系相比，肝、脾与体重的比值较大。20月龄的雄鼠脾脏有淀粉样变。有自发过血压过高症，老年鼠心脏有病变，雌雄鼠均有动脉硬化。对鼠伤寒沙门氏菌补体敏感，对麻疹病毒中度敏感。对利什曼原虫属、立克次氏体和百日咳组织胺易感因子敏感。DIO小鼠价格查询实验小鼠在噪声应激环境中，皮质醇水平持续升高，表现出焦虑样行为。
品系名称:A53T(帕金森疾病)品系编号:D000053品系背景:C57BL/6J统神经突触末端的可溶性蛋白，是Lewy小体的重要组成部分。研究发现在家族遗传性帕金森病中存在有3种突变(A53T,A30P和E46K)和其野生型二倍体的表达，SNCA点突变或者二倍体都会导致a-synuclein蛋白聚集成Lewy小体，阻碍了多巴胺的代谢和神经元的正常功能，导致神经元的死亡。Prnp-SNCA*A53T转基因小鼠在朊蛋白启动子的指导下表达突变的人A53Ta-突触**白。纯合子转基因小鼠是可存活、有生育能力且大小正常的。在8月龄大时，一些纯合子小鼠出现了逐渐严重的运动表型，表现为体重减轻、颤抖、无法直立、肢体部分瘫痪和行动不便等对8~12月龄小鼠进行免疫组化分析,发现a-5yn包涵体在脊髓、脑干、小脑和丘脑中密集堆积，且这些包涵体的结构、位置和发病特征类似于人类家族性帕金森病。除此之外,小鼠从6月龄时就表现出气味辨别和嗅觉受损。攻击性是可以观察到的，尤其是在雄鼠中。杂合子小鼠同样表现出相似的表型特征，但发病时间较晚，在22~28月龄之间。另外同样可以观察到攻击性行为。纯合小鼠经常发生非生产**配(nonproductivematings)。应用领域:a-Synuclein的聚集研究以及家族性帕金森病研究。
卡文斯隆重推出基于CRISPR/Cas9技术的小鼠基因组编辑服务！CRISPR(ClusteredRegularlyInterspacedShortPalindromicRepeats)/Cas(CRISPR-associated)是近几年出现的一种由RNA指导Cas核酸酶对靶向基因进行特定DNA修饰的技术。它是细菌和古细菌为应对病毒和质粒不断攻击而演化来的获得性免疫防御机制。此系统的工作原理是crRNA(CRISPR-derivedRNA)通过碱基配对与tracrRNA(trans-activatingRNA)结合形成tracrRNA/crRNA复合物，此复合物引导核酸酶Cas9蛋白在与crRNA配对的序列靶位点处剪切双链DNA，从而实现对基因组DNA序列进行编辑；而通过人工设计这两种RNA，可以改造形成具有引导作用的gRNA(guideRNA)，足以引导Cas9对DNA的定点切割。基于CRISPR/Cas9技术，常州卡文斯提供基因编辑实验鼠定制服务，助力前沿生物医学研究。
腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。卡文斯实验鼠以专业、高效的服务支持全球生命科学研究。小鼠售后服务
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实验动物常见的给药物使用方法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结：1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定，注意头一定要固定好，头和躯体要保持一条直线，并且灌胃时使小鼠成竖直位，头向上。2.把握要领，动作尽量迅速，减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量：0.1ml/10g体重：一只20g的小鼠，一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线，太松会动，太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针，抵达咽部会有抵触感，小鼠会有吞咽动作，此时阻力丧失，可继续下行。ApoE小鼠数量
