M-SAN HQ中盐核酸酶发挥酶活性的条件比较广。例如，该酶适宜的盐浓度（NaCl）范围是0mM-225mM，能耐受400mM NaCl浓度。适宜反应温度为20℃-37℃，能耐受4℃-40℃。Mg2+浓度大于0.5mM即可，在4-15mM范围即可表现更高活性。跟其他核酸酶不同，M-SAN HQ中盐核酸酶不是碱性核酸酶，其适宜pH为7.2-8.7，能耐受6.3-8.7。综合这些特点，在生理盐条件下，M-SAN HQ的酶活是传统全能核酸酶的5倍左右。因此，可以说M-SAN HQ是更适合生理盐条件下的核酸酶。在细胞培养液或收获的培养上清中，不需调整任何组分，M-SAN HQ中盐核酸酶即可表现较高核酸酶活性。山西培养基条件中盐核酸酶
通过三质粒瞬转体系生产病毒载体，会引入宿主细胞DNA残留（HCD）、蛋白残留（HCP）、工艺杂质（如antibiotics、核酸酶等外源物质）等污染，存在潜在的致瘤性和免疫原性等风险。药品监管机构一般允许生物制品中存在10ng/dose以下的残留DNA。此外，根据杂质来源、工艺以及产品类型不同，也会对HCD限度做不同要求。为了达到这个要求，一般通过核酸酶处理和色谱联用的方法。一般在细胞培养液裂解/收获、澄清收获及超滤浓缩等环节加入核酸酶处理，需要工艺摸索来确认处理方式。江苏ArcticZymes中盐核酸酶宿主细胞DNA主要以染色质形态存在，其中组蛋白通过离子作用及疏水作用与DNA紧密结合；
在干细胞医治领域， 某些疾病靠单纯的细胞替代并不能取得满意效果。利用逆转录病毒和慢病毒将外源目的基因整合到干细胞基因组，对基因功能缺失的遗传病具有良好疗效，但也存在一定致瘤风险。相比之下，CRISPR/Cas9基因编辑技术能够精确实现基因敲入、敲除及碱基修复。因此， 采用CRISPR/Cas9基因编辑技术对干细胞进行基因改造，不仅能够增加干细胞医治的疾病范围，也能更大程度地保证疗效的安全性。目前，CRISPR/Cas9在干细胞医治领域发挥着重要作用，同时更多由CRISPR/Cas9编辑的干细胞药物正在开发中。
伦敦大学学院（UCL）的工艺开发团队，在细胞药物Car-T涉及的慢病毒（Lentivirus，LV）生产过程中，比较了Benzonase和M-SAN HQ中盐核酸酶在酶活、酶切时间、各阶段LV的稳定性等方面的表现，发现在生理盐条件下M-SAN HQ中盐核酸酶酶活更高、酶切时间更短，同时用纳米颗粒分析（NTA）技术确认M-SAN HQ组得到的LV病毒颗粒聚集更少、稳定性更高。他们会继续探究HCD是否影响LV的稳定性，及对LV侵染效率和生命周期是否有影响。通过更多研究，我们探究M-SAN HQ中盐核酸酶助力LV生产的关键机制。M-SAN HQ中盐核酸酶生产符合ISO 13485:2016规范，提供相关文件用于申报。
对于含包膜的病毒载体，如慢病毒LV、逆转录病毒RV等，在细胞培养上清液中收获。而M-SAN HQ中盐核酸酶，作为市场上更适合生理盐条件的核酸酶，所以，M-SAN HQ成了包膜病毒载体生产的更好选择。优势在于：1. M-SAN HQ兼容多种细胞培养体系，在细胞培养盐浓度条件下具有更优活性；2. M-SAN HQ酶活更高、酶切速度更快，缩短孵育时间；3. M-SAN HQ能够高效剪切染色质到更小片段，简化下游工艺流程；4. 相比Benzonase，M-SAN HQ用量减少1/2-2/3，降低了酶用量及生产成本。生理盐浓度下，M-SAN HQ中盐核酸酶性能优于常用核酸酶，对HCD的去除有些本质区别。海南中盐核酸酶70950-150
M-SAN HQ中盐核酸酶终产品放行检测包括microbe、Fungus及内毒检测等；山西培养基条件中盐核酸酶
除了获得载体的滴度及产量，生产慢病毒更关心的指标主要是各种污染物的去除。总DNA污染的去除百分比在99.1-99.84%，总蛋白污染物的去除百分比在99.85-99.9%。针对宿主细胞的DNA（HCD）及蛋白（HCP），有报道其去除百分比分别为99.8%和99.4%。因为不仅残存的DNA可能是个问题，而且DNA的大小以及由此引起的可能转移整个有功能的开放阅读框也是问题，因此监管机构对残存DNA污染的分子量上限的要求越来越高。例如，FDA的指南‘生产用于传染病适应症的病毒疫苗的细胞基质和其他生物材料的特性和鉴定’中说明，残留的细胞宿主的DNA片段不能超过一个功能基因的长度，估计在200bp左右。山西培养基条件中盐核酸酶
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