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精子手工计数原理及操作方法

1.原理：将精液用适当的稀释液作一定量稀释后，混匀注入计数池内计数，再算出每毫升精液中精子数。2.方法（按照***版第四版《全国临床检验操作规程》）1).于小试管内加精子稀释液0.38ml,取液化精液20μl,加入稀释液内混匀。2).充分摇匀后,滴入改良Neubauer计数板的计数池内,静置1~2分钟,待精子下沉后,以精子头部作为基准进行计数。

3.计算1).如每个**中方格内精子少于10个,应计数所有25个中方格内的精子数。2).如每个**中方格内精子在10~40个,应计10个中方格内的精子数。3).如每个**中方格内精子多于40个,应计数5个中方格内的精子数。公式：精子数=计数结果/计数中方格×25×1/计数池高度×20×103/ml=计数结果/计数中方格×1/计数池高度×5×103/ml HAMILTON THORNE精子分析仪可分析参数，直线性（LIN）‌：曲线轨迹的直线性。美国精子分析DAP

ivos自动精子分析系统

hamiltonthorne的casa系统适用于临床、研究实验室、动物繁殖基地、水产业、制药公司等各种领域，成为了精液分析业的金标准。可以应用于包括人类、公牛、马、、狗、兔子、老鼠、绵羊、山羊、鱼以及各种濒危动物。全自动的ivos可以提供快的分析速度以及高质量数据输出。可以使用一次性的和可重复的载玻片，深度从10um～100um。每次分析捕捉100帧图像，扫描速度每秒60帧。**的软件升级。ivos能提供：、客观、具有重复性的结果高速分析，在60hz下半秒扫描30帧为实验室节省成本。高等级数据安全。（顺应美国fda的操作软件）数据结果包括：计数、浓度。运动以及前进运动三种速度参数vap，vsl和vcl，外加运动参数lin，alh，str和bcf。内置质控保证分析精度可以回放精子活动，标记不同状态精子。迅速根据新的设定对上次分析结果进行重新计算，此过程不会损失画面。形态可选附件：三维严谨形态（人类）：的经过认证的严谨的形态分析。用户自定义形态。即时形态分析荧光可选附件：自定义荧光（只有ivos）可以用滤光片的casa系统。高精度的计数。同时在氙气灯析运动和静止，使用各种荧光染色，自动探测计数染色细胞，自动归类，可选彩色摄像头。 美国精子分析DAP全自动精子分析仪在临床Z疗中展现了明显的优势。

方法:使用两种已知浓度的质控乳胶珠溶液,1份浓度为(35±5)×106/ml,另1份浓度为(18.0±2.5)×106/ml,评价4种计数方法的准确性和精确性,并比较4种方法计数精液的结果。结果:计数乳胶珠时,CellVU计数池的结果**接近已知浓度,分别为(39.70±4.76)、(19.09±2.02)×106/ml,变异系数(CV)值分别为12.80%和10.58%;血细胞计数池和Makler计数池结果均高于已知浓度,前者为(44.84±4.86)×106/ml、(21.04±1.87)×106/ml,CV值分别为10.81%和8.89%,后者为(52.36±7.78)×106/ml、(24.54±3.67)×106/ml,CV值分别为14.86%和14.96%;CASA系统结果低于已知浓度,为(28.53±2.06)、(14.62±0.95)×106/ml,但CV值比较低,分别为7.22%和6.50%。计数精液时,CellVU计数池与CASA系统结果差异无***性(P=0.71),分别为(45.28±34.52)、(41.96±31.93)×106/ml,血细胞计数池和Makler计数池结果差异无***性(P=0.14),分别为(76.98±59.90)、(63.89±53.84)×106/ml,CellVU计数池、CASA系统与血细胞计数池、Makler计数池结果间差异***(P<0.05或P<0.01)。结论:计数精液时,CASA系统与CellVU计数结果差异无***性。各实验室可选择合适的手工或CASA计数方法。

检查具备条件

受检者，经历一段经常排精过程后，禁房事5－7天（上次排精到取标本间隔时间至少不得少于100小时）； [1]备大口有盖清洁干燥容器一个，以**方式获取精液，一次全部射入容器，盖上盖，记录标本离体时间； 贴身保温，30分钟内送到化验室，并向检验员提供标本取出时间。 精液常规观察：精液总容量（毫升），精子活动情况，精子密度（个/毫升），精液液化时间（标本取出到精液液化的时间），不动精子（个/高倍视野）等。见不动精子，须染色方可区分：不活动的精子、死精子、未成熟精子等。找不到精子必须离心后检验，仍然找不到精子；方可报告无精。经三次取样化验，结果仍然找不到精子方可确认无精子症。 精子分析，平均角位移（MAD）‌：精子头沿其曲线轨迹瞬时转折角度的时均J对值‌。

测定精子密度和精子总数的方法主要包括显微镜计数和全自动分析。1.显微镜计数：这是传统的测定方法，需要收集精液，通常是使用量杯。收集后，应在实验室中尽快进行计数。应在光学显微镜下将精子进行分类，这一步非常重要，因为完整的精子才能被计数。然后，将剩余的精液样本通过自然沉降或离心的方法让精子下沉，通过显微镜观察并计数。这种方法需要一定的经验和技巧，而且受到许多因素的影响，如精子的活动性、浓度、形态等。2.全自动分析：随着科技的发展，现在有全自动的精子分析仪，可以快速准确地测定精子密度和总数。这种方法通过激光技术进行，可以测量大量精子，包括前向运动的精子。这些仪器通常可以提供更精确的结果，并且减少了人为错误。在进行精子计数前，男性应避免长时间禁欲，因为这可能会影响精子的数量和质量。同时，健康的饮食和生活方式也有助于提高精子的数量和质量。全自动精子分析仪严格按照世界卫生组织（WHO）和KRUGER标准，并通过ISO9001认证。美国精子分析DAP

男性精液检测主要依赖计算机辅助精子分析仪(computer assistant semen analyses，CASA)。美国精子分析DAP

Hamilton Thorne精子分析仪IVOS Ⅰ与IVOS Ⅱ一致性比对分析

根据质量控制的要求,对新精子分析系统进行性能验证后,应与旧系统进行一致性评价,从而保证检测结果的准确性。方法:选用原有Hamilton Thorne精子分析仪IVOSⅠ为参比仪器,新购仪器IVOSⅡ为实验仪器,对精子分析系统的主要参数(精子浓度、前向运动精子百分率、总活力)进行分析比对。结果:两台仪器的方法内和方法间离群值检验、偏倚图和散点图的线性关系和离群值检测所有参数均能符合比对要求,检测结果具有相关性;对实验仪器的检测结果适合范围的检验,当其精子浓度r=0.988,前向运动精子百分率r=0.975,总活力r=0.981,r均≥0.975,表明取值范围合适;对预期偏倚(Bc)的接受性评价表明当精子浓度在12×10~6/ml,允许总误差(TEa)为6.67%;当前向运动精子百分率<31%,TEa为2.34%,两项检测的Bc上限<1/2允许误差(Ea),实验仪器经比对分析显示符合质控要求。结论:通过比对分析,得出两台精子分析系统的主要参数(精子浓度、前向运动精子百分率、总活力)结果具有可比性,检测结果一致,可同时用于临床标本的检测。 美国精子分析DAP