芯弃疾JX-8B数字ELISA产品
每个生物实验室都用得起的单分子免疫检测
数字ELISA测量蛋白质浓度远低于传统ELISA的能力源于两种效应：1）SiMoA对酶标记的高度敏感性；以及2）通过数字化蛋白质检测可以实现的低背景信号。任何免疫测定的灵敏度由其灵敏度决定。检测技术到标签，抗体亲和力，试验背景，以及背景测量值的变异（%CV）27.SiMoA对酶非常敏感标签（图2）为在数字ELISA中检测亚飞摩尔浓度的标记蛋白提供了基础。也就是说，对于给定亲和力的抗体，其灵敏度为免疫测定将由测定背景决定，SiMoA的高标记灵敏度有助于降低这种背景。对照实验表明，数字ELISA的背景来自于检测抗体和酶的非特异性结合（NSB）与捕获珠表面结合（补充表2）。AsSiMoA相比传统检测方法具有更高的标记灵敏度，明显减少了检测抗体（~1nM)和酶标记物（1–50pM)的需要，以检测结合事件，与传统方法相比（标记试剂浓度~10nM)。降低的标记物浓度减少了NSB到捕获表面，从而导致背景信号明显降低。 芯弃疾JX-8B简易版单分子ELISA检测产品，极速检测，快至15min就能完成的单分子免疫检测！创新性数字ELISA检测平台开发
芯弃疾JX-8B数字ELISA产品
每个生物实验室都用得起的单分子免疫检测
由于活性珠子的百分比接近50%（酶与微球的比例大于~1：1.5)，然而，使用图像分析软件区分“开启”和“关闭”孔变得具有挑战性，我们达到了数字动态范围的实际上限。例如，图2中7fM(~45%活性）的信号偏离了线性。因此，这里使用50,000个孔展示的数字线性动态范围是从3.5fM到350zM，即大约四个对数单位。前提是蛋白质使用适当的酶浓度进行标记，这种动态范围对于许多临床应用来说是足够的 创新性数字ELISA检测平台开发芯弃疾JX-8B数字ELISA，超敏检测，理论可达飞克级；
芯弃疾JX-8B数字化高灵敏ELISA芯片检测产品，与sioma产品的区别：
simoa产品为什么很难普及：主要问题：效果好、但成本高、平台庞大、不灵活、不开放；大部分实验室买不起设备！即使公用平台上了设备，大部分课题组也用不起耗材试剂！仪器：巨大，价格>300万；芯片+试剂：每套1万元以上；
Simoa的技术方案很难小型化，大部分反应流程都在芯片外进行，必须依赖大型自动化设备，与大部分生物实验室、医学实验室的灵活、低成本使用场景不符。
芯弃疾JX-8B数字ELISA高敏检测产品；
先进新型的单分子检测方法的普及版；每个生物/医学实验室都用得起的单分子免疫检测；使用现有平台就能做的单分子免疫检测；
芯弃疾.数字ELISA-独特创新技术方案：单分子芯片阵列化技术+POCT小型化：使用微米级捕获结构+二次流原理，磁珠捕获量更多（数十万磁珠反应载体）、更稳定捕获；绝大部分试剂反应迁移到芯片上，能真正实现“芯片实验室”（LabonChip)；
同样的检测方案，通过数十万个磁珠阵列中，逐一检测到每个阳性磁珠信号，得到高灵敏的检测结果。 4）数字化高敏ELISA芯片，微量样本实现多重快速检测！
芯弃疾JX-8B数字ELISA产品每个生物实验室都用得起的单分子免疫检测我们的方法利用了亚飞克尔反应室阵列（图1C）我们称之为单分子阵列（SiMoA）——可以分离和检测单个酶分子20-24。这种方法借鉴了Walt等人20-23的工作阵列用于研究单个酶的动力学和抑制作用。我们的目标是利用捕获和检测单个酶的能力来检测用酶标记的单个蛋白质分子。在这个单分子免疫测定的第一步（图1A)，在微球（直径μm）上形成一个三明治抗体复合物，结合的复合物用酶标记，如同常规的基于微球的ELISA。当测定含有极低浓度蛋白质的样品，蛋白质的比值分子（以及由此产生的酶标记复合物）与微球的比例很小（通常小于1：1)，因此含有标记免疫复合物的微球百分比遵循泊松分布，导致单个微球上存在单一免疫复合物。例如，如果在(3000个分子）的蛋白质中捕获并标记了50μM的蛋白质，并且在200，000个微球上进行标记，则珠子，然后，。无法检测到这些低数量的酶使用标准检测技术（例如，平板阅读器）的标签，因为荧光染料由每种酶生成的产物扩散到一个大卵试验体积（通常为)，并进入其中需要数十万种酶标签才能产生高于该水平的荧光信号背景。 芯弃疾JX-8B单分子普惠化ELISA检测产品，微量检测，使用10uL样本就能测试；芯弃疾数字ELISA快速检测
芯弃疾JX-8B单分子小型化ELISA检测产品，低成本单分子检测；创新性数字ELISA检测平台开发
芯弃疾JX-8B数字ELISA高敏检测产品，使用现有平台就能做的单分子免疫检测；
参考的其他高灵敏检测方法： 创新性数字ELISA检测平台开发
两种更多测试的模拟分析信号放大技术是免疫PCR和生物条形码分析。免疫PCR通过将检测抗体标记为DNA分子，然后使用PCR进行扩增和定量，从而提高灵敏度。生物条形码分析利用了与DNA“条形码”标记的抗分析物纳米颗粒，这些纳米颗粒在与捕获在金微粒上的分析物结合后，从纳米颗粒上脱杂以进行定量。这两种方法相对于传统免疫分析法的灵敏度提高了10到100倍，但尚未整合到所需的全自动系统中，也未用于多重分析。为了比较大限度地加速药物发现、验证新型生物标志物并将分子水平诊断引入临床主流，需要一种具有高效率、高质量数据和成本效益的稳健、多重超灵敏蛋白质检测技术。
