蛋白A-微球菌核酸酶(pA-MNase)是一种特殊的融合蛋白,它结合了蛋白A和微球菌核酸酶(MNase,MicrococcalNuclease)的特性。以下是pA-MNase的一些关键特点和应用:1.**融合表达产物**:pA-MNase是蛋白A与微球菌核酸酶MNase的融合表达产物,因此它同时具有ProteinA的抗体结合活性和MNase的核酸内切酶活性。2.**双重功能**:由于其双重功能,pA-MNase常用于蛋白质-DNA相互作用研究,特别是在ChIC(ChromatinImmunocleavage)和CUT&RUN(CleavageUnderTargetsandReleaseUsingNuclease)技术中。3.**ProteinA的特性**:ProteinA是一种发现于金黄色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)的细胞壁表面蛋白,分子量为42kDa,能特异性地与哺乳动物免疫球蛋白(Immunoglobulin,Ig)结合,通常结合部位为免疫球蛋白的Fc区。4.**微球菌核酸酶(MNase)的特性**:MNase是一种核酸内切酶,能够降解核酸,常用于降解蛋白质制备中存在的核酸,减少细胞裂解液的粘度,以及用于染色质结构分析和快速RNA测序。5.**反应条件**:MNase的反应条件包括1XMicrococcalNucleaseReactionBuffer,需要补充100µg/ml重组白蛋白,分子生物学级,并在37°C下孵化。Ultra-Long Master Mix 是一种用于长片段PCR扩增的预混液,它含有经过特殊修饰的热稳定Taq DNA聚合酶。Recombinant Rat BD-4
在PCR实验中,防止非特异性扩增的关键在于优化实验条件和采取一些特定的策略。以下是一些有效的方法:1.**优化引物设计**:引物设计是PCR成功的关键。应确保引物序列具有高度特异性,避免与非目标序列互补。使用在线工具进行引物设计,并进行BLAST搜索以确认特异性。2.**使用热启动PCR**:热启动PCR技术可以抑制室温下的DNA聚合酶活性,减少非特异性扩增。这种方法通过在高温下激起酶的活性,从而在PCR体系配制阶段降低引物与模板或引物与引物之间的非特异性结合。3.**调整Mg2+浓度**:Mg2+浓度对PCR扩增的特异性和产量有重要影响。过高的Mg2+浓度可能导致非特异性扩增,因此需要优化Mg2+浓度以获得比较好的结果。4.**退火温度优化**:退火温度对PCR特异性至关重要。较高的退火温度有助于减少非特异性结合,但过高的退火温度可能会降低引物与模板的结合效率。通常,退火温度设置比引物的Tm值低5°C左右。5.**使用降落PCR**:降落PCR(TouchdownPCR)通过在初始循环中使用较高的退火温度,然后逐渐降低退火温度,从而在PCR开始时减少非特异性扩增,同时在后续循环中保持特异性扩增。Recombinant Human MSPR/RonProtein,His TagUDG在结构上属于单功能DNA糖基化酶,它通过沿着DNA链滑动,识别尿嘧啶分子,进行碱基切除。
Lambda核酸外切酶(LambdaExonuclease,简称λExonuclease)是一种具有特定特性和应用的酶,以下是其主要特点和应用:1.**特异性作用**:λExonuclease是一种5'→3'核酸外切酶,能选择性地沿5'→3'方向消化5'端磷酸化的双链DNA。2.**酶切活性**:对单链DNA和5'端未磷酸化修饰的DNA的酶切活性较低,不能从DNA的切刻或缺口处起始消化。3.**嗜磷酸性**:该酶具有非常强的嗜磷酸性,磷酸化的核酸链与非磷酸化的核酸链的切割效率相差达200倍以上。4.**切割效率**:Lambda核酸外切酶是一种具有高度持续性的碱性核酸外切酶,可以连续地将核酸切割成为单个碱基,切割比较高速率可以达到1000nt/S。5.**应用领域**:-生成单链PCR产物用于DNA测序。-DNA单链构象多态性(SSCP)分析。-滚环扩增。-从双链DNA片段生成单链DNA。-PCR产物的克隆。-质粒制备净化。6.**酶活性定义**:Oneunitisdefinedastheamountofenzymerequiredtoproduce10nmolofacid-solubledeoxyribonucleotidefromdouble-strandedsubstrateinatotalreactionvolumeof50μlin30minutesat37ºCin1XLambdaExonucleaseReactionBufferwith1μgsonicatedduplex[3H]-DNA。
5'-3'外切核酸酶活性是指DNA聚合酶能够从DNA链的5'端向3'端切除核苷酸的能力。这种活性通常用于修复受损的DNA或去除错误配对的核苷酸。具体来说,5'-3'外切核酸酶活性可以在DNA合成过程中切除前方的核苷酸,帮助错误或不需要的序列,从而确保DNA的正确复制和修复。在DNA聚合酶中,5'-3'外切核酸酶活性与聚合酶活性相辅相成。聚合酶在合成新链时,5'-3'外切酶活性可以在发现错误时进行修正,确保合成的DNA链的准确性。例如,E.coliDNA聚合酶I具有这种外切酶活性,可以在合成过程中去除错误的核苷酸,从而提高DNA的保真度。需要注意的是,BstDNAPolymerase,LargeFragment不具有5'-3'外切核酸酶活性,这使得它在某些应用中更为稳定,特别是在等温扩增反应中,如LAMP(环介导等温扩增)和RCA(滚环扩增)等。泛素化蛋白随后被靶向到26S蛋白酶体进行降解,或出现蛋白位置或活性变化。
使用BloodGenomicDNAIsolationKitwithMagneticBeads(血液基因组DNA提取试剂盒,磁珠法)进行血液样本中基因组DNA的提取,主要步骤如下:1.**实验准备**:准备抗凝全血样本(如EDTA抗凝血),移液器及无菌,15ml离心管,无水乙醇,70%乙醇,干净的吸水纸,涡旋振荡器,金属浴/水浴,台式离心机等。2.**样本处理**:取适量血液样本,根据试剂盒要求,可能需要将血液体积调整至特定量,例如200μl,并可能需要加入PBS缓冲液。3.**裂解血液细胞**:向血液样本中加入蛋白酶K和细胞裂解液,涡旋混匀后,置于金属浴或水浴中进行裂解,通常在65°C孵育10-15分钟,并在此期间定期混匀。4.**DNA与磁珠结合**:向裂解后的样本中加入异丙醇和磁珠悬浮液,涡旋混匀后,室温放置一段时间,以便于基因组DNA与磁珠结合。5.**磁珠分离**:将样本置于磁力架上,待磁珠聚集后,小心移除上清液,去除杂质。6.**洗涤磁珠**:向磁珠中加入漂洗液和洗涤液,进行洗涤以去除残留的蛋白质和盐分,然后再次使用磁力架分离磁珠,移除洗涤液。
许多Probe qPCR Mix (2×)产品采用热启动DNA聚合酶,能减少非特异性扩增,提高反应的灵敏度和特异性 。Recombinant Rat BD-4
磁珠法PCR/DNA纯化试剂盒与传统纯化方法相比具有以下优势:1.**操作简便快捷**:磁珠法纯化过程通常可以在15分钟内完成,包括结合、洗涤和洗脱步骤,无需复杂的离心或抽滤操作。2.**高纯度和高回收率**:磁珠法纯化得到的DNA纯度高,通常回收率可以达到90%以上,适用于100bp以上的DNA片段的纯化,对达到10kb片段DNA的纯化也能保持较好的效果。3.**适用性广**:磁珠法PCR/DNA纯化试剂盒适用于多种样本类型,包括PCR产物、酶切产物、连接产物等,也适用于低浓度样品的浓缩。4.**安全性高**:操作过程中不涉及酚/氯仿等有毒试剂,更加环保和安全。5.**灵活性**:可以根据实际状况灵活调节磁珠用量,适应不同体积和浓度的样品处理。6.**自动化和高通量**:磁珠法纯化试剂盒适合手工操作,也可用于自动化工作站或核酸自动提取仪,实现高通量操作。7.**温和的条件**:磁珠法条件温和,对DNA的损伤小,适合后续的多种分子生物学实验,如酶切、连接、转化细菌、测序、PCR、杂交等。8.DNA片段适应性**:适用于从150bp到50kb的DNA片段的纯化,能够满足大多数分子生物学实验的需求。
使用BloodGenomicDNAIsolationKitwithMagneticBeads(血液基因组DNA提取试剂盒,磁珠法)进行血液样本中基因组DNA的提取,主要步骤如下:1.**实验准备**:准备抗凝全血样本(如EDTA抗凝血),移液器及无菌,15ml离心管,无水乙醇,70%乙醇,干净的吸水纸,涡旋振荡器,金属浴/水浴,台式离心机等。2.**样本处理**:取适量血液样本,根据试剂盒要求,可能需要将血液体积调整至特定量,例如200μl,并可能需要加入PBS缓冲液。3.**裂解血液细胞**:向血液样本中加入蛋白酶K和细胞裂解液,涡旋混匀后,置于金属浴或水浴中进行裂解,通常在65°C孵育10...