这些常用免疫组织化学方法的原理如下：
1. 免疫荧光细胞化学技术
将已知抗体标上荧光素,以此作为探针检查细胞或组织内的相应抗原,在荧光显微镜下观察.当抗原抗体复合物中的荧光素受激发光的照射后会发出一定波长的荧光,从而可以确定组织中的抗原定位或定量.
2. 免疫酶细胞化学技术
是免疫组织化学研究中较好常用的技术．基本原理是先以酶标记的抗体与组织或细胞作用，然后加入酶的底物，生成有色的不溶性产物或具有一定电子密度的颗粒，通过光镜或电镜，对细胞或组织内的相应抗原进行定位或定性研究．
3. 免疫胶体金技术
就是用胶体金标记一抗，二抗或其他的能特异性的结合免疫球蛋白的分子（如葡萄球菌A蛋白）等作为探针对组织或细胞内的抗原进行定性，定位或定量研究．由于胶体金的电子密度高，多用于免疫电镜的单标记或多标记的定位研究
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冰冻切片是借助低温冷冻将活检组织快速冻结达到一定的硬度进行制片的一种方法，手术中等待冰冻快速病理报告，以病变性质而决定手术方式和范围。而及时、准确的发出报告需要高质量的冰冻切片，鉴于冰冻切片常出现染色模糊不清的现象，对病理判断造成困难，甚至造成误诊或漏诊，实践中我们发现和组织固定、染色时返蓝有一定关系，为了提高冰冻制片质量，我们将FAA、Bouin氏液、88酒精三种固定液作了比较，并在染色中加用促蓝液，认为用88酒精固定液及染色时加用促蓝液制作的冰冻切片质量较理想，辽宁IHC免疫组化公司哪里有免疫组化哪里好就找融享生物。
检测中的显色反应免疫组化显色是一种酶促反应，它通过连结在抗原抗体复合物上的过氧化物酶或碱性磷酸酶与底物DAB发生反应，生成有色的复合物沉淀在组织细胞中的抗原部位。由于标本组织来源不同，细胞分化不一，抗原含量不等，显色反应所需时间不可能完全一致。整个免疫组化过程步骤较多，每步应按操作要求严格操作，脱蜡时间一定要充分。每步PBS冲洗时间、次数一定不能省略，因PBS液内含有盐，可以减少背景染色。滴加试剂时要均匀、足够，要比切片上的组织界限宽出0.05~0.35cm防止出现边缘效应。即使是同一种抗体，由于产品批号不同，其效价可能有差异，因此，新购进的抗体一定要进行预实验，找出比较好条件并进行记录。此外，组织浸液的温度，切片烘烤的温度控制，实验操作过程中的室内温度及抗体的效价等都是影响免疫组化标记质量的重要因素。耐心细致的工作态度，标准化、规范化的操作，是完成实验的基本保证。
物质所具有的抗原性主要由分布在抗原表面的抗原决定簇决定。固定液的固定对免疫组化的正确结果极其重要，此液能使抗原保存良好。抗原修复的好坏直接影响着免疫组化检测结果的可靠性。在进行免疫组化时并非所有的抗原都要进行抗原修复，抗原性保存良好或基本保存者不需要修复。目前抗原修复的方法主要有蛋白酶消化法、硼氢化钠（NaBH4）修复法和热修复法。较常用的是热修复法，尤其是细胞核抗原经热修复后，其染色效果特别好。所以我们必须清楚影响抗原性的因素及各种抗原修复的方法，严格按照抗体说明书进行抗原修复。鉴于抗原修复时间的方法较多，在实际工作中，究竟选用何种抗原修复法，应根据抗原抗体种类予以选择，必要时可以多种方法同时使用，这样使其更具有针对性，标记结果更理想。上海融享生物做免疫组化，HE染色，免疫荧光。
阴性染色产生的原因有:
⑴一抗和二抗浓度不合适或孵育条件不妥。
⑵荧光素提前衰退。荧光素质量不佳或操作过程中没有注意避光等防止荧光素衰退的事项。
⑶血清封闭时间过长。
⑷抗体稀释液PH值不合适，影响抗原抗体反应。
⑸组织切片不平、裂片或脱片很严重，易引起大块阴性着色。
⑹组织标本不新鲜或已经冷冻组织制成的切片中抗原易弥散，易引起本来表达的部位阴性染色或弱着色。
⑺荧光显微镜不会使用，激发波长选择错误。
免疫组化，是应用免疫学基本原理--抗原抗体反应，即抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂(荧光素、酶、金属离子、同位素)显色来确定组织细胞内抗原(多肽和蛋白质)，对其进行定位、定性及相对定量的研究，称为免疫组织化学技术(immunohistochemistry)或免疫细胞化学技术(immunocytochemistry)。 免疫组化服务性价比高周期短。动物实验免疫组化机构哪家好
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织材料的处理
组织材料的处理是获得良好免疫组织化学结果的前提，必需保证要检测的细胞或组织取材新鲜，固定及时，形态保存完好，抗原物质的抗原性不丢失、不扩散和被破坏（下节 详述）。
三、免疫染色
可在细胞涂片或组织切片上进行免疫染色。一般程序是：①标记抗体与标本中抗原反应结合；②用PBS洗去未结合的成分；③直接观察结果（免疫荧光直接法）；或显色后再用显微镜观察（免疫酶直接法）。在此基础上发展出间接法，多层法，双标记法等各种方法，将在本书各有关章 节 内详述。
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